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羊棘球蚴(包虫)病基因工程亚单位疫苗的工业化生产及应用

2016-04-05赵扬扬李春燕刘晓竹邓灿新重庆澳龙生物制品有限公司重庆荣昌40460西南大学荣昌校区动物医学系重庆荣昌40460

四川畜牧兽医 2016年5期
关键词:工业化生产包虫病

曹 政,赵扬扬,林 雅,李春燕,刘晓竹,邓灿新(.重庆澳龙生物制品有限公司,重庆荣昌40460;.西南大学荣昌校区动物医学系,重庆荣昌40460)



羊棘球蚴(包虫)病基因工程亚单位疫苗的工业化生产及应用

曹政1,赵扬扬1,林雅1,李春燕1,刘晓竹1,邓灿新2
(1.重庆澳龙生物制品有限公司,重庆荣昌402460;2.西南大学荣昌校区动物医学系,重庆荣昌402460)

摘要:本文对羊棘球蚴(包虫)病基因工程亚单位疫苗的工业化生产工艺及应用效果进行了研究,为有效防控包虫病在人畜间传播奠定了基础。

关键词:包虫病;基因工程亚单位疫苗;Eg85;工业化生产

棘球蚴病又称包虫病,是人和动物感染细粒棘球绦虫及多房棘球绦虫的幼虫所致的疾病。包虫病是严重危害人体健康和生命安全、影响畜牧业健康发展的重大人畜共患寄生虫病之一。世界动物卫生组织将其列为B类动物疾病,我国将其列为二类动物疫病和人兽共患病[1]。本文对羊棘球蚴(包虫)病基因工程亚单位疫苗的工业化生产及应用进行了研究,为包虫病的预防提供坚实的基础。

1 材料与方法

1.1材料

1.1.1菌种本文所用菌种由重庆澳龙生物制品有限公司提供。

1.1.2试验羊只试验所用绵羊(240只)由新疆维吾尔自治区、内蒙古自治区某养殖场提供;试验用山羊(240只)由四川省甘孜州及阿坝州某养殖场提供。

1.1.3工艺辅料种子培养基及发酵培养基为LB培养基;包涵体洗液I、包涵体洗液II为自制;变性液为8mol尿素变性液。

1.2方法

1.2.1检测方法SDS-PAGE电泳检测目的条带,多联酶标仪测定总蛋白含量,BandScan软件分析目的蛋白含量,按照《中华人民共和国兽药典》(指2010版,下同)检测成品中水分含量、无菌效果、真空效果,完成安全检验及效力检验。

1.2.2检测标准羊棘球蚴(包虫)病基因工程亚单位疫苗的成品检测标准包括:外观检测成品应为乳白色疏松固体;蛋白纯度检测Eg85纯度应不低于60%,每头份成品中Eg85蛋白含量不少于50 μg,Quil A佐剂不少于1mg。疫苗整个生产过程应严格执行GMP相关标准,疫苗成品的真空度、水分残留、外源微生物都要符合《中华人民共和国兽药典》的要求。

2 具体生产工艺

2.1工业化生产车间重庆澳龙生物制品有限公司于2008年建成了世界上第一条包虫病疫苗生产流水线,产品于2011年投放市场,现已大规模生产和上市销售。

2.2发酵工艺

2.2.1一级种子制备取一支-80℃保存的工作种子,按1%分别接种于两份LB(Amp+、Chl)培养基,37℃振荡培养。培养至对数期时,转交于发酵生产线。

2.2.2二级种子制备取一瓶50mL生长于对数期的一级种子,按1%~2%接种于1.5 L LB(Amp+)培养基中,共接种8瓶,150r/min37℃振荡培养,培养过夜至饱和后,将二级种子收集在一起,放4℃暂存。

2.2.3高密度发酵在正式发酵前一天,按配方配制合成培养基,并在发酵罐中进行实消,保持罐压不低于0.03MPa。正式发酵时调节培养基温度至37℃,调节pH值在7.0。按比例加入终浓度为0.1%的Amp。接入二级种子,搅拌速度开至150r/min,初始罐压保持0.04 MPa,37℃培养发酵8~10h,当细菌生长进入对数后期时,添加终浓度为1mmol/L的IPTG,继续培养4~6 h,诱导蛋白表达,发酵完成后对菌体进行灭活。

2.3纯化工艺

2.3.1菌体初纯对已灭活菌体进行15000r/min离心,离心后菌体用1%NaCl重悬,通过高压均质机破碎细胞,破碎后通过管式连续离心机离心,收集菌体。

2.3.2菌体精纯提前配制精洗液I与精洗液II,破碎后包涵体用精洗液I重悬,常温搅拌1~2 h,搅拌结束后离心收集包涵体再用精洗液II重悬并搅拌1~2h,管式连续离心机离心,收集包涵体。

2.4半成品制备工艺

2.4.1包涵体变性将精洗后合格的包涵体按1﹕20比例用变性液重悬,在37℃条件下搅拌过夜。搅拌结束后用管式连续离心机离心去除杂质,离心后变性液用0.45nm与0.22nm孔径的超滤装置超滤,回流液残留用0.45nm与0.22nm平板滤器过滤。

2.4.2除菌过滤变性液经过滤后,继续用0.45nm 及0.22nm平板滤器在无菌条件下进行无菌过滤。过滤后的变性液送样检测是否存在杂菌,质量不达标则需重复操作。

2.4.3佐剂配制将Quli A佐剂用复性液配制成150mg/mL的佐剂母液,用平板滤器作无菌过滤。过滤后佐剂母液送样检测是否存在杂菌,若质量不达标则需重复操作。

2.5配苗分装工艺取半成品变性液及佐剂母液各一份,在搅拌条件下用无菌复性液快速复性,按照3.0mL/瓶进行分装配苗,分装完成的苗液需要冻干,冻干完成后进行压盖、贴标、装盒。

3 成品检测

3.1物理性状检验本疫苗成品应表现为白色海绵状疏松团块,加入稀释液后迅速溶解。

3.2真空度检验冻干、压盖后的成品应具有一定的真空度,按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行真空度测定,应为紫色光辉。

3.3剩余水分检验按现行《中华人民共和国兽药典》附录进行测定,成品水分含量不得超过3.5%。

Industrial Production and Application of Hydatidosis Genetic Subunit Vaccine on Sheep

CAO Zheng1,ZHAO Yangyang1,DENG Canxin2,et al.
(1.Chongqing Auleon Biologicals Co.Ltd.,Chongqing Rongchang 402460;2.Department of Veterinary Medicine of Rongchang Campus,Southwest University,Chongqing Rongchang 402460,China)

Abstract:This paper researched the industrial production technics and application effect of hydatidosis genetic subunit vaccine on sheep,it aimed at prevention and control hydatidosis spread between people and animals.

Key words:Hydatidosis;Genetic engineering subunit vaccine;Eg85;Industrial production

中图分类号:S858.272.734

文献标识码:B

文章编号:1001-8864(2016)05-0028-03

收稿日期:2016-03-28

基金项目:重庆市农业科技成果转化资金项目(cstc2015jcsf-ny cgzhA10002)

作者简介:曹政(1884-),男,内蒙古锡林浩特市人,研究员,博士,从事微生物分子生物学研究。

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