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光合细菌产辅酶 Q10培养条件的优化

2015-07-13王晓丽夏伟张浩等

安徽农业科学 2015年15期
关键词:辅酶

王晓丽 夏伟 张浩等

摘要

[目的]为了对光合细菌培养条件进行优化。[方法]通过单因素试验方法。[结果]在实验室条件下,光照强度为60 W,接种量为10%,培养基初始pH 6.5,培养温度 32 ℃,培养时间为72 h。优化后,辅酶Q10产量达到112.7 mg/L,比优化前增加提高了63.57%。[结论] 按照优化之后的培养条件进行发酵,辅酶Q10的产量得到大幅提高。

关键词 辅酶 Q10;光合细菌;培养条件

中图分类号 S188 文献标识码

A 文章编号 0517-6611(2015)15-001-02

Optimization of Cultivation Condition in Photosynthetic Bacteria that Produced Coenzyme Q10

WANG Xiaoli, XIA Wei, ZHANG Hao et al

(Qingdao Zhongren Animal Pharmaceutical Co.,Ltd., Qingdao, Shandong 266329)

Abstract [Objective] The research aimed to optimize the cultivation condition of the photosynthetic bacteria.[Method] The single factor method was adopted.[Result] In lab condition, light intensity was 60 W, inoculation was 10%, initial pH of culture medium was 6.5, temperature was 32 ℃, and incubation time was 72 h.Coenzyme Q10 production reached 112.7 mg/L after optimization,and increased by 63.57% compared with preoptimization.[Conclusion] The yield of coenzyme Q10 increased sharply by fermentation according to the optimized cultivation condition.

Key words Coenzyme Q10;Photosynthetic bacteria;Cultivation condition

辅酶 Q10(CoQ10)又称泛醌,是一种存在于自然界的脂溶性醌类化合物,在原核细胞内存在于细胞质膜中,在真核细胞内主要存在于线粒体内,是呼吸链中NADH脱氢酶、琥珀酸脱氢酶和bc复合物之间的重要递氢体[1-2]。辅酶 Q10作为呼吸链组分之一,参与细胞能量物质——三磷酸腺苷的合成,能抑制线粒体的氧化,维护膜结构的完整性,提高机体免疫力,在抗肿瘤、高血压、心脏病及提高免疫系统等方面有重要功能,是临床价值颇高的生化药物[3-5]。

辅酶 Q10的生产方法有4种,分别是动植物组织提取法、化学合成法、植物细胞培养法和微生物发酵法,其中微生物发酵法因具有广泛的来源、相对简单的提取过程、良好的产物活性、相对高的产量等优点而日益受到社会的关注[6]。在众多微生物中,光合细菌菌体中CoQ10的含量相对较高。国外的微生物发酵技术较成熟,通过培养光合细菌提取CoQ10已实现产业化,而国内的微生物发酵技术比较薄弱,生产技术还不成熟,目前主要从动物组织中提取[7]。笔者在培养光照强度、接种量、培养基初始pH、培养温度和培养时间5个方面对光合细菌培养条件进行了优化,为CoQ10相关产品的研发奠定良好的基础。

1 材料与方法

1.1 菌种 供试光合细菌菌种由青岛中仁动物药品有限公司提供。

1.2 培养基 种子培养基组成为:葡萄糖 20.5 g/L、蛋白胨 2.0 g/L、氯化钠10.0 g/L、硫酸铵3.5 g/L、醋酸钠6.5 g/L、硫酸镁8.5 g /L、硫代硫酸钠4.8 g/L、硫酸亚铁1.5 g/L、磷酸氫二钾2.8 g/L、磷酸二氢钾3.5 g/L,pH 7.0,121 ℃ 灭菌 30 min。

1.3 液体培养条件

向250 ml三角瓶中加入100 ml培养基,按2%(V∶V)的初始接种量将种子液接入培养基中,培养温度为 30 ℃,60 W白炽灯充当光源,150 r/min 振荡培养 48 h,辅酶Q10的产量达 68.9 mg/L。

1.4 辅酶 Q10的提取和测定

量取5 ml发酵液,在转速为5 000 r/min 条件下离心 10 min,弃上清,用蒸馏水洗涤1 次,再于转速为5 000 r/min条件下离心10 min,弃上清,加入0.5 ml浓度30% H2O2和2 ml丙酮,用无水乙醇定容至 10 ml,35 ℃下超声 50.0 min,用孔径为0.22 μm 有机过滤器过滤,即可获得辅酶 Q10样品。通过高效液相色谱仪进行测定,检测波长 275 nm,BEH C181.7 μm 色谱柱(2.1 mm×50.0 mm) ,流动相V(甲醇)∶V(乙醇) 1∶4,柱温 35℃,流速0.4 ml/min[8-10]。

1.5 辅酶 Q10培养条件的优化

1.5.1 不同光照强度对辅酶 Q10合成的影响。

在光合细菌培养过程中,分别以15、40、60、100和200 W的白炽灯充当光源对其进行照射,考察辅酶 Q10产量受光照强度的影响。

1.5.2 不同接种量对辅酶 Q10合成的影响。在光合细菌接种时,其接种量分别为2%、5%、10%、15%、20%、25%、30%(V∶V),考察辅酶 Q10产量受接种量的影响。

1.5.3 不同初始 pH 对辅酶 Q10合成的影响。

在光合细菌培养基配制后,分别将其初始 pH 调至 5.5、6.0、6.5、7.0、75,8.0,考察辅酶 Q10产量受初始 pH 的影响。

1.5.4 不同培养温度对辅酶 Q10合成的影响。

在光合细菌培养过程中,分别将其置于 26、28、30、32、34、36 ℃振荡培养箱中,考察辅酶 Q10产量受培养温度的影响。

1.5.5 不同培养时间对辅酶 Q10合成的影响。

在光合细菌培养过程中,分别在24、48、72、96、120 h不同的发酵时间,取发酵液进行检测,考察辅酶 Q10产量受培养时间的影响。

2 结果与分析

2.1 培养条件的优化

2.1.1 光照强度对辅酶 Q10合成的影响。

由图1可知,当以60 W白炽灯充当光源时,辅酶 Q10产量最高,达到68.9 mg/L。随着光照强度的增强,辅酶 Q10产量下降。原因可能是当光源为60 W白炽灯时,此条件下光的波长易被光合细菌吸收。所以,选择60 W白炽灯为培养光源。

2.1.2 接种量对辅酶 Q10合成的影响。由图2可知,当接种量为10%时,辅酶 Q10产量最高,达到 86.3 mg/L。过低的接种量(如2%)导致菌体生长缓慢,辅酶 Q10合成量偏低;而当接种量高于10%时,光合细菌虽然繁殖迅速,但有限的营养成分抑制菌体生长,辅酶 Q10的合成也随之降低。

2.1.3 初始 pH对辅酶 Q10合成的影响。

由图3可知,当 pH 值为6.5时,辅酶 Q10的合成量最高,达到 108.4 mg/L,偏低或偏高的pH均会影响辅酶 Q10的合成。这可能是由于培养基初始 pH会影响光合细菌的细胞状态,进而影响菌体对培养基的利用率,影响辅酶 Q10的合成。

2.1.4 培养温度对辅酶 Q10产量的影响。

由图4可知,在 32 ℃,辅酶Q10的产量达到最大值(109.0 mg/L),因此发酵生产的最适温度为32 ℃。过低或过高的培养温度都不利于辅酶 Q10的合成。

2.1.5 培养时间对辅酶 Q10产量的影响。由图5可知,在24~72 h,辅酶 Q10累积量迅速升高,达到112.7 mg/L;在72~120 h,辅酶 Q10的累积量仍然不断升高,但速度非常缓慢。所以,光合细菌的最佳培养时间为72 h。

2.2 中试发酵罐试验对比

向5 L中试发酵罐中加入3.5 L培养基,按优化之前的培养条件培养,辅酶Q10产量为66.4 mg/L;按优化之后的培养条件培养,即初始培养基pH调为6.5,60 W白炽灯充当光源,10%(V∶V)的初始接种量,培养温度为 32 ℃,培养 72 h,提取辅酶Q10,并进行检测,其产量为100.9 mg/L,比优化之前提高52.0%。由5 L中试发酵罐扩大到生产大罐进行发酵,还需要根据具体的生产情况对发酵工艺进行调整。

3 结论

光合细菌在自然界中普遍存在,是地球上出现最早且具有原始光能合成体系的原核生物。光合细菌富含辅酶Q10。辅酶Q10是人类生命不可缺少的重要元素之一,具有增强抗氧化、延缓衰老、增强心肌功能、改善细胞内呼吸等多种生理功能,能够促进动物的生长,提高免疫力[11]。光合细菌的培养条件是影响辅酶 Q10生产的关键因素[12]。研究表明,在实验室条件下,当光照强度为60 W,接种量为10%,培养基初始pH为6.5,培养温度为32 ℃,培养时间为72 h时,辅酶Q10产量由优化前的68.9 mg/L达到112.7 mg/L,增长了6357%。5 L中试发酵罐的试验结果显示,按照优化之后的培养条件进行发酵,辅酶Q10产量比优化之前提高了52.0%。

参考文献

[1]

钱雪,王祖巧,韩国平,等.辅酶 Q10的药理及应用[J].食品与药品,2006,8(1):16-18.

[2] 汪多仁 .辅酶 Q10的开发与应用进展 [J].饮料工业,2010,13(8):8-16.

[3] 王淑英,邵忠富.辅酶Q10的生物学功能及临床应用[J].齐齐哈尔医学院学报,1994,15(1):47-50.

[4] 陈炳志,赵瑾,王超杰,等 .辅酶 Q10的应用概况与合成进展[J]. 化学研究,1999,10(1):29-33.

[5] 何兆雄.动物生化制药基础[M].北京:中国商业出版社,1985:299-308.

[6] 吴向华,杨启银,刘五星.光合细菌的研究进展及其应用[J].中国农业科技导报, 2004, 6(2): 35-38.

[7] 吴祖芳,翁佩芳,李寅,等.辅酶 Q10发酵生产的育种思路及发酵条件优化策略 [J]. 食品与发酵工业,2001,27(7):49-53.

[8] YOSHIDA H,KOTANI Y,OCHIAI K,et al.Production of ubiquinone10 using bacteria [J]. Journal of General and Applied Microbiology,1998,44(1):19-26.

[9] NOHL H,STANIEDK K,GILLE L,et al.The multiple functions of Coenzyme Q [J]. Bioorganic Chemistry,2001,29(1):1-13.

[10] 佘晓雷,王根华.辅酶Q10的纯化和鉴定方法研究[J].食品研究与开发,2004,4(9):129-130.

[11] FORKERS K.Biomedical and clinical aspects of coenzyme Q[M].Amsterdam:Elsevier/NorthHolland Press,1977:316.

[12] FLORKIN M M,STOTZ E H.In comprensive biochemistry[M].Amsterdam:Elesiver,1996.

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