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肝癌组织中HuR和HIF-1α的表达及其相关性

2015-04-04刘利平江建新鲍世韵张育森何婉暨南大学第二临床医学院深圳市人民医院广东深圳5800湖北省肿瘤医院

山东医药 2015年18期
关键词:细胞核阳性细胞染色

刘利平,江建新,鲍世韵,张育森,何婉(暨南大学第二临床医学院,深圳市人民医院,广东深圳5800;湖北省肿瘤医院)

肝癌组织中HuR和HIF-1α的表达及其相关性

刘利平1,江建新2,鲍世韵1,张育森1,何婉1
(1暨南大学第二临床医学院,深圳市人民医院,广东深圳518020;2湖北省肿瘤医院)

摘要:目的观察人抗原R(HuR)和缺氧诱导因子(HIF) -1α在肝癌组织中的表达变化,并探讨其相关性。方法取48例肝癌组织及癌旁组织标本,采用免疫组化染色法检测肝癌组织及癌旁组织中HuR和HIF-1α蛋白的表达,采用荧光定量PCR法检测肝癌组织中HIF-1α mRNA的表达。结果肝癌组织中HuR和HIF-1α蛋白阳性表达率分别为67%和58%,显著高于癌旁组织的19%和10% (P均<0.01)。肝癌组织中HuR与HIF-1α蛋白的表达呈正相关(r=0.723,P<0.01)。HuR蛋白高表达者中HIF-1α mRNA的表达较HuR蛋白低表达者显著上调(P <0.05)。结论肝癌组织中HuR和HIF-1α蛋白表达上调且呈正相关关系,HuR可能增强HIF-1α mRNA的稳定性,从而促进其表达。

关键词:肝癌;人抗原R;缺氧诱导因子-1α; RNA结合蛋白

实体瘤在生长过程中,由于肿瘤细胞增殖过快和新生血管功能缺陷,常常造成局部组织微环境缺氧。缺氧诱导因子(HIF) -1α是介导肿瘤适应缺氧状态的重要转录因子[1],在缺氧状态下可转运至细胞核内,与HIF-1β结合成为有活性的HIF-1复合物,再与下游靶基因的缺氧反应元件(HRE)结合,启动下游靶基因的转录,促进肿瘤细胞生长、侵袭、转移和化疗耐药[1,2]。然而缺氧状态下细胞内基因转录常常受到抑制,蛋白翻译也通常受阻。人抗原R(HuR)为RNA结合蛋白,可通过与靶基因末端富含腺嘌呤和尿嘧啶的序列结合,增强mRNA的稳定性和调节蛋白翻译[2,3]。因此,HIF-1α和HuR分别在转录水平和转录后水平调节肿瘤细胞对缺氧的适应性。本研究对肝癌组织中HIF-1α和HuR蛋白表达情况进行检测,分析二者的相关性。现报告如下。

1 资料与方法

1.1临床资料选择深圳市人民医院2013~2014年行手术切除的肝癌患者48例,男46例、女2例,年龄31~65岁、平均49.5岁。其中乙肝表面抗原阳性35例。患者术前均未接受化疗、放疗及免疫治疗。取手术切除的肝癌组织及对应的癌旁组织(距肿瘤边缘2 cm以上)各48例份,液氮中保存备用。标本经10%甲醛固定,常规脱水、石蜡包埋。所有标本均经病理组织学检查证实。

1.2检测指标

1.2.1HuR和HIF-1α蛋白检测采用免疫组化法。将石蜡切片脱蜡至水,3% H2O2室温孵育15 min灭活内源性过氧化物酶,微波抗原修复,滴加10%山羊血清37℃封闭1 h。弃封闭液,加入100 μL鼠抗人HuR单克隆抗体(1∶200稀释),4℃过夜。依次滴加生物素化二抗、亲和素(试剂A)、辣根过氧化物酶(HRP)标记的亲和素(试剂B),PBS冲洗,DAB显色,苏木素复染,脱水、透明、封片。显微镜下观察染色结果,以PBS代替一抗做为阴性对照。HuR阳性表达为细胞核染棕黄色,HIF-1α阳性表达为细胞核和(或)细胞质染棕色。结果判定采用半定量计分法,根据阳性细胞染色强度和阳性细胞率乘积来判定。染色强度评分标准:无特异染色为0分,轻度染色为1分,中度染色为2分,强染色为3分;阳性细胞率评分标准:无为0分,1%~25% 为1分,26%~50%为2分,51%~75%为3分,>75%为4分。两项乘积等于0~4分为低表达,5~12分为高表达。

1.2.2HIF-1α mRNA检测采用Real-time PCR法。取约2 mm3大小的肿瘤组织,加入TRIZol液提取细胞总RNA,取1 μg逆转录为cDNA。采用Premier Primer 5软件设计基因引物,HIF-1α引物上游5'-ACTTCTGGATGCTGGTGATTTG-3',下游5'-GCTTCGCTGTGTGTTTTGTTCT-3';β-actin引物上游5'-GTCCACCGCAAATGCTTCTA-3',下游5'-TGCTGTCACCTTCACCGTTC-3'。将cDNA稀释10倍,向每个PCR反应孔中加入1 μL,并加入10 nmol的上、下游引物各0.5 μL,无核酸酶的超净水8 μL和SYBR Green Supermix 10 μL。PCR反应在ABI 7900HT荧光定量PCR检测系统上运行,程序设置为: 95℃2 min; 95℃10 s,60℃60 s,循环40次; 72℃延伸10 min。扩增完毕后进行熔解曲线分析。实验重复3次,采用2-ΔΔCt计算相对mRNA表达。

1.3统计学方法采用SPSS13.0统计软件,计量资料用珋x±s表示,组间比较采用t检验,计数资料采用χ2检验或Fisher确切概率法,非正态分布资料采用Mann-Whitney检验,相关性分析采用Spearman相关检验。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1肝癌组织和癌旁组织中HuR和HIF-1α蛋白表达HuR蛋白在肝癌中的表达主要定位于细胞核,为粗细不一的棕褐色颗粒,并有明显的异质性。肝癌组织和癌旁组织中的HuR蛋白阳性表达率分别为67%(32/48)和19%(9/48),二者比较差异有统计学意义(P<0.01)。HIF-1α蛋白在肝癌中的表达主要定位于胞质中,部分细胞核也有表达,呈棕黄色弥漫性分布。肝癌和癌旁组织中的HIF-1α蛋白阳性表达率分别为58% (28/48)和10% (5/48),二者比较差异有统计学意义(P<0.01)。

2.2肝癌组织中HuR蛋白与HIF-1α蛋白表达的相关性48例肝癌组织标本中,HuR和HIF-1α均低表达14例,均高表达25例。同一标本中以HIF-1α表达阳性细胞染色强度和阳性细胞率乘积评分为横坐标,HuR表达评分为纵坐标,制成散点图,见图1。由图1可见,肝癌组织中的HuR与HIF-1α表达呈正相关(r=0.723,P<0.01)。

2.3肝癌组织中HuR蛋白表达与HIF-1α mRNA的关系将肝癌组织根据HuR表达的高低分为两组,HuR高表达组HIF-1α mRNA表达为7.96± 1.79,HuR低表达组为3.55±1.26,两组比较差异有统计学意义(P<0.05)。

3 讨论

HuR蛋白是胚胎致死异常视觉基因家族中最重要的RNA结合蛋白,可通过与靶基因末端富含腺嘌呤和尿嘧啶的序列结合,增强mRNA的稳定性并调控其蛋白翻译。HuR在多种正常组织中都有表达,主要分布于细胞核,在炎性因子、缺氧等因素的刺激下表达增高[3,4]。HuR在膀胱癌、肺癌、乳腺癌、胰腺癌、胃癌及结肠癌等恶性肿瘤中的表达较正常组织明显升高,并与患者预后相关[5~7]。本研究发现,HuR蛋白在肝癌组织中的表达较癌旁组织中显著增高,提示HuR可能与肝癌的发生关系密切。HuR通过与其靶基因(如c-myc、P53、Cyclin D1、Cyclin A、survivin、Bcl-2、COX-2、TNF-α、VEGF、MMP-9)结合,调控癌基因、细胞周期、细胞凋亡、炎症因子、侵袭转移等相关分子,在肿瘤发生及恶性转化等方面发挥重要作用[8,9]。

HuR蛋白的表达受多方面因素的调控。NF-κB、Smad转录因子可与HuR启动子结合促进其转录,在转录水平上调HuR mRNA的表达。然而miR-9、miR-16、miR-34a、miR-125a和miR-519等微小RNA可与HuR的3'-末端翻译区结合,下调HuR蛋白及mRNA的表达[9]。本研究发现,HuR与HIF-1α蛋白在肝癌组织中的表达呈正相关关系,HIF-1α在肿瘤组织中的表达高低通常反映缺氧程度,提示缺氧可能是刺激HuR表达的重要因素。在缺氧状态下,HIF-1α与HIF-1β结合成为有活性的HIF-1复合物,与受其调节的下游靶基因HRE结合,形成转录起始复合物,启动下游靶基因的转录[1]。HIF-1α能否通过与HuR启动子结合促进其基因转录和蛋白表达还有待进一步研究。

HIF-1α的表达与缺氧密切相关,在缺氧状态下泛素化蛋白水解酶受抑制,HIF-1α蛋白降解减少,从而表达增加[1]。然而在缺氧状态下细胞整体转录水平下降,因此HIF-1α mRNA的表达应该受到抑制[3]。研究表明,HuR蛋白可以增强细胞内mRNA的稳定性。为明确HIF-1α mRNA与HuR蛋白表达的关系,我们将肝癌组织根据HuR表达的高低分为两组,结果显示,HuR高表达组HIF-1α mRNA表达较低表达组明显增高,提示HuR蛋白可能在mRNA水平调节HIF-1α的表达。研究证实,HIF-1α mRNA 的3'-和5'-末端翻译区携带有多个ARE[8]。因此,虽然缺氧导致HIF-1α基因转录受到抑制,但是HuR可能增加HIF-1α mRNA的稳定性,从而上调HIF-1α蛋白的表达。同时,在CoCl2模拟缺氧条件下,HuR还可以促进HIF-1α蛋白翻译[8]。因此,HuR蛋白在肝癌组织中可以通过多种机制上调HIF-1α的表达。

综上所述,HuR和HIF-1α蛋白在肝癌组织中表达明显上调,且两者表达呈正相关关系。HuR可能通过稳定HIF-1α mRNA和促进其翻译,从而上调HIF-1α的表达。

参考文献:

[1]Semenza GL.Defining the role of hypoxia-inducible factor 1 in cancer biology and therapeutics[J].Oncogene,2010,29 (5) : 625-634.

[2]徐香兰,韩冰,钟启平,等.RNA干扰沉默HIF-1α基因对舌癌Tca8113细胞侵袭和迁移的影响[J].山东医药,2013,53(43) : 5-8.

[3]Masuda K,Abdelmohsen K,Gorospe M.RNA-binding proteins implicated in the hypoxic response[J].J Cell Mol Med,2009,13 (9A) : 2759-2769.

[4]罗年安,屈亚琦,董瑞.RNA结合蛋白HuR与肿瘤关系的研究进展[J].生物医学工程与临床,2014,18(4) : 390-393.

[5]Kotta-Loizou I,Giaginis C,Theocharis S.Clinical significance of HuR expression in human malignancy[J].Med Oncol,2014,31 (9) : 161-169.

[6]Lauriola L,Granone P,Ramella S,et al.Expression of the RNA-binding protein HuR and its clinical significance in human stage I and II lung adenocarcinoma[J].Histology and histopathology,2012,27(5) : 617-626.

[7]Zhu Z,Wang B,Bi J,et al.Cytoplasmic HuR expression correlates with P-gp,HER-2 positivity,and poor outcome in breast cancer[J].Tumour Biol,2013,34(4) : 2299-2308.

[8]Galban S,Kuwano Y,Pullmann R,et al.RNA-binding proteins HuR and PTB promote the translation of hypoxia-inducible factor 1alpha[J].Mol Cell Biol,2008,28(1) : 93-107.

[9]Wang J,Guo Y,Chu H,et al.Multiple Functions of the RNABinding Protein HuR in Cancer Progression,Treatment Responses and Prognosis[J].Inter J Mol Sci,2013,14(5) : 10015-10041.

Expression and correlation of HuR and HIF-1α in hepatocellular carcinoma

LIU Li-ping1,JIANG Jian-xin,BAO Shi-yun,ZHANG Yu-sen,HE Wan
(1 The Second Clinical Medical College of Jinan University,Shenzhen People's Hospital,Shenzhen 518020,China)

Abstract:ObjectiveTo investigate the expression and correlation of human antigen R (HuR) and hypoxia-inducible factor (HIF) -1α in hepatocellular carcinoma (HCC) tissues.Methods Forty-eight cases of HCC tissue and adjacent tissue samples were collected from patients undergoing surgical resection.The expression of HuR and HIF-1α protein in the HCC and adjacent tissues was detected by immunohistochemical staining.The mRNA expression of HIF-1α in the HCC tissues was detected by fluorescent quantitative PCR.Results The positive expression rates of HuR and HIF-1α protein in the HCC tissues were 67% and 58%,respectively.These rates were significantly higher than the positive expression rates of HuR and HIF-1α protein (19% and 10 %) in the adjacent tissues (all P<0.01).The expression of HuR protein was positively correlated with the expression of HIF-1α protein in the HCC tissues (r=0.723,P<0.01).The mRNA expression of HIF-1α mRNA in the group with high expression of HuR protein was significantly up-regulated as compared with that of the group with low expression of HuR protein (P<0.05).Conclusions The expression of HuR and HIF-1α protein was up-regulated and positively correlated with each other in the HCC tissues.HuR may enhance the stability of HIF-1α mRNA,and thus increase the expression of HIF-1α protein.

Key words:liver carcinoma; human antigen R; hypoxia-inducible factor-1α;RNA-binding protein

(收稿日期:2015-02-03)

通信作者简介:何婉(1978-),女,主治医师,研究方向为肿瘤基础与临床。E-mail: hewanshenzhen@ hotmail.com

作者简介:第一刘利平(1982-),男,主治医师,研究方向为肝癌基础与临床。E-mail: leoliping@ aliyun.com

基金项目:国家自然科学基金资助项目(81402041、81160311)。

文章编号:1002-266X(2015) 18-0007-03

文献标志码:A

中图分类号:R735.7

doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.18.003

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