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外源激素对清香核桃插穗愈伤组织及根系形成的影响

2015-02-28郑志新张小红

贵州农业科学 2015年5期
关键词:外源清香生根

郑志新, 张小红

(河北北方学院 园艺系, 河北 张家口 075000)



外源激素对清香核桃插穗愈伤组织及根系形成的影响

郑志新, 张小红

(河北北方学院 园艺系, 河北 张家口 075000)

为扦插繁殖技术在难生根树种核桃上的应用提供依据,以5年生清香核桃为试材,采用双层基质弥雾繁殖箱繁殖法,研究外源激素对清香核桃插穗愈伤组织及根系形成的影响。结果表明:单一外源激素处理,IBA浓度为100 mg/kg时,出愈时间和出愈率最短与最大,分别为29 d和25.8%。ABT1号生根粉浓度为100 mg/kg时,出愈时间最短、出愈率最高和生根时间最短,分别为24 d、28.7%和49 d;根长、根系粗度和根系质量最长/粗/好,分别为5.9 cm、2.8 mm和0.52。IBA+ABT1组合处理浓度为100 mg/kg+200 mg/kg时,出愈时间、生根时间和出愈率分别为14 d、38 d和39.8%;根长、根粗和根系质量分别达8.1 cm、4.4 mm和0.75。IBA+ABT1组合处理效果较单一IBA处理好。

外源激素; 单一激素; 组合的激素; 清香核桃; 出愈情况; 生根情况

核桃(JuglansregiaL)为胡桃科核桃属落叶乔木,是我国重要的坚果和木本油料树种,因其具有极高的营养价值、经济、社会和生态效益而被广泛栽培。传统的种子繁殖由于自然杂交及实生变异[1],容易丧失优良品种特性,使得苗木良莠不齐,种性混杂,从而降低了核桃的经济价值。因而近年来,核桃的无性繁殖一直是科研热点[2-4],其中对核桃的嫁接繁殖研究相对较多[5-6]。裴东[3]、郭吉民[7]等对核桃的扦插繁殖进行了相对系统的研究,认为外源激素、插穗性状等对核桃插穗愈伤组织、根系的形成具有重要的影响,虽然也取得了一定的成果,但是由于核桃体内自身潜在根源基很少、酚类物质存在等原因使得插后不定根的诱导相对困难,限制了扦插繁殖技术在核桃等难生根树种上的推广应用。目前,扦插繁殖在核桃育苗工作中仍处于探索阶段。笔者采用双层基质弥雾繁殖箱(自创)繁殖法,研究不同外源激素对清香核桃插穗愈伤组织及根系形成的影响,以期为清香核桃及其他品种的扦插繁殖提供借鉴和参考。

1 材料与方法

1.1 试验材料

清香核桃为5年生嫁接苗,购自山西晋南苗木基地,栽植在河北北方学院南校区农场,栽植第2年采条进行扦插繁殖。

1.2 试验方法

试验于2012年9月在河北北方学院南校区温室内进行,该区域位于N39°36′~N42°10′,E113°50′~116°30′,属温带大陆性气候,四季分明,雨热同季,昼夜温差大。室内温湿度、光照度可调节。

1.2.1 插条处理 选生长健壮,无病虫害的当年生枝条,根据试验设计制作不同规格插穗,下切口斜形,部分插穗基部韧皮部纵伤。

1.2.2 试验设计

1) IBA和ABT1单独处理。IBA和ABT1号生根粉单独处理的浓度梯度分别为0、50 mg/kg、100 mg/kg、150 mg/kg和200 mg/kg,浸泡插穗基部10 min;以清水浸泡插穗为对照(CK)。

2) IBA+NAA组合处理。以IBA 100 mg/kg时,添加不同浓度NAA(100 mg/kg、200 mg/kg和300 mg/kg),IBA浸泡10 min后NAA再浸泡10 min。试验采用完全随机设计,每个处理20个插穗,3次重复。

1.2.3 扦插方法 试验采用双层基质弥雾繁殖箱(自创)繁殖法,繁殖箱中双层基质均为河沙,扦插前800倍多菌灵消毒,下层基质铺满,上层基质在花盆中,于清晨进行,扦插深度以插穗能直立为宜。

1.3 插后管理

扦插完毕后作好记录,放置温湿度计,每天根据天气及温度变化情况随时调整喷水时间和喷水量,繁殖箱内温度保持在(25±5)℃,基质湿度保持在60%,空气相对湿度80%以上。

1.4 测定指标

出愈时间、出愈率、生根时间、根数、根长、根粗和根干重。其中,出愈率=(形成愈伤组织株数/扦插总数)×100%,根干重采用烘干法。

1.5 数据处理

对所得数据采用Microsoft Excel 2010进行处理和分析。

2 结果与分析

2.1 IBA和ABT1不同浓度单独处理对清香核桃愈伤组织和根系形成的影响

从表1可知,当IBA浓度为100 mg/kg时,出愈时间最短和出愈率最大,分别为29 d和25.8%。随着浓度增大,出愈时间增加。100 mg/kg与150 mg/kg处理差异不显著,100 mg/kg与50 mg/kg和200 mg/kg处理呈极显著差异;其余3个浓度之间差异不显著。除50 mg/kg处理外,其余浓度处理愈伤组织均有生根现象,以100 mg/kg浓度处理生根时间最短,为53 d,随着浓度增加,生根时间延长;不同浓度处理之间生根数呈极显著差异,以100 mg/kg时根数最多,随着浓度的增加,根数减少,且150 mg/kg与200 mg/kg处理也呈极显著差异;根长、根粗、根系质量与根数的变化趋势一致,100 mg/kg时根系最长、最粗,分别为5.4 cm和2.1 mm,与150 mg/kg和200 mg/kg处理呈极显著差异,且150 mg/kg与200 mg/kg处理间也呈极显著差异。

从表1看出,ABT1号生根粉浓度为100 mg/kg时,出愈时间最短、出愈率最高和生根时间最短,分别为24 d、28.7%和49 d,出愈时间明显的低于其余3个处理,出愈率与其余3个处理呈极显著差异;150 mg/kg处理与其余2个处理也呈极显著差异,50 mg/kg和200 mg/kg处理之间无显著差异;生根数极显著优于其余浓度处理,150 mg/kg极显著优于50 mg/kg,与200 mg/kg之间无显著差异,200 mg/kg处理和50 mg/kg处理之间也无显著差异;100 mg/kg时,根长、根系粗度和根系质量最长/粗/好,分别为5.9 cm、2.8 mm和0.52,极显著优于其余浓度处理。

2.2 IBA和ABT1组合处理对清香核桃愈伤组织和根系形成的影响

由表2可知,组合激素可在一定程度上提高单一激素的扦插效果。IBA+ABT1组合处理清香核桃插穗,各生长指标均不同程度地优于IBA单独处理。出愈时间和生根时间,IBA+ABT1组合处理均早于IBA单独处理。其中,IBA+ABT1组合浓度为100 mg/kg+200 mg/kg时,出愈和生根时间分别为14 d和38 d,较单一IBA100 mg/kg处理的29 d和53 d明显缩短;出愈率,除IBA+ABT1组合浓度为100 mg/kg+400 mg/kg与IBA 100 mg/kg时无显著差异,其余浓度组合均极显著地优于单一IBA处理,且IBA+ABT1组合浓度为100 mg/kg+200 mg/kg时最大,达39.8%;根长、根粗和根系质量,IBA+ABT1组合浓度为100 mg/kg+200 mg/kg处理极显著优于其余浓度组合,也极显著地优于单一IBA 100 mg/kg,分别达8.1 cm、4.4 mm和0.75。而IBA 100 mg/kg与IBA+ABT1组合浓度100 mg/kg+200 mg/kg和100 mg/kg+300 mg/kg之间呈显著差异,IBA100 mg/kg与IBA+ABT1组合浓度100 mg/kg+400 mg/kg处理之间呈极显著差异,IBA100 mg/kg与IBA+ABT1组合浓度100 mg/kg+100 mg/kg处理之间呈显著差异。

表1 IBA和ABT1单独处理清香核桃愈伤组织和根系的形成情况

注:1)△表示有不定根产生,○表示无生根现象(下同)。2)多重比较用新复极差法,小写字母表示差异显著,大写字母表示差异极显著(下同),—表示没有数据。

Note: △, adventitious root. ○, without rooting. Multiple comparisons is conducted by Duncan's new multiple range method. Capital and lowercase letters indicate significance of difference at very significance and significance level.—, without the data. The same below.

表2 混合激素处理清香核桃愈伤组织和根系的形成情况

3 结论与讨论

1)研究结果表明,添加一定浓度的植物生长调节剂可极显著地提高清香核桃的扦插生根率,添加IBA和ABT1号生根粉,均以100 mg/kg为最佳,且ABT1号生根粉的出愈时间、出愈率、生根时间及根系生长情况均好于IBA。IBA+ABT1组合激素扦插效果明显优于单一IBA处理。IBA+ABT1组合浓度为100 mg/kg+200 mg/kg处理很大程度上可提高清香核桃的愈合生根及根系生长。

2)外源激素在一定程度上可提高扦插效果,说明插穗内激素的动态平衡调控着清香核桃扦插不定根的发生过程。IBA适宜浓度辅以适度的水分及其他环境条件管理诱导愈伤组织及根系形成效果良好,而ABT1号生根粉的效果又极显著优于IBA,IBA+ABT1组合处理也显著地优于单一IBA处理,这与库尔班·苏莱曼等[8]的室内扦插效果一致,这可能是因为在不同的试验条件下,外源激素的诱导效果不尽相同;也有可能是由于一种外源激素的添加会刺激插穗体内内源激素或是某种外源激素作用的发挥或抑制植物体内单宁类物质的形成或分解[9]。因插穗数量的限制,不能保证所有插穗的粗度、长度、营养物质含量等的一致性,关于外源激素对清香核桃体内单宁类物质含量影响机理还应进行进一步的研究验证。

[1] 余光英.核桃优株实生子代遗传性状的研究[J].贵州林业科技,1995,23(3):7-16.

[2] 裴 东,袁丽钗,奚声珂.核桃品种试管幼茎生根的研究[J].林业科学,2002,38(2):32-37.

[3] 裴 东.核桃等树种不定根发生及其无性繁殖[M].北京:中国环境出版社,2009.

[4] 周贝贝,张俊佩,王 伟,等.Fe3+浓度对核桃成熟子叶离体生根培养的影响[J].经济林研究,2011,29(1):124-127.

[5] 吴名武,车凤斌,肖 雷.新疆阿克苏地区核桃坐地嫁接技术试验[J].中国果树,2010,7(4):49-51.

[6] 薛金国,常 娟,李留振.影响核桃嫁接成活率的因子研究[J].江苏农业科学,2011,39(3):191-192.

[7] 郭志民,王青龙,徐虎智,等.核桃嫩枝扦插技术试验研究[J].河南林业科技,2009,29(1):9-10.

[8] 库尔班·苏来曼,阿衣古力·阿不都瓦依提,阿布来克·尼牙孜,等.不同生根剂对四种核桃扦插成活率和根数的影响[J].新疆农业科学,2012,49(9):1657-1661.

[9] 肖关丽.植物组织培养过程中内源激素研究进展[J].云南农业大学学报,2001,16(2):136.

(责任编辑: 杨 林)

Effects of Exogenous Hormone on Formation of Cali and Roots of QingxiangJuglansregiaCuttings

ZHENG Zhixin, ZHANG Xiaohong

(DepartmentofHorticulture,HebeiNorthUniversity,Zhangjiakou,Hebei075000,China)

The effect of exogenous hormone on formation of cali and roots of cuttings of QingxiangJ.regiawith 5 years old was studied by bi-layer substrate mist spraying propagation method to provide the scientific basis for application of cutting propagation technique inJ.regia. The callus formation time and callus rate of cuttings treated with IBA(100 mg/kg) are 29 d and 25.8% respectively. The callus formation time, callus rate, rooting time, root length, root diameter and root quality index of cuttings treated with ABT1(100 mg/kg) are 24 d, 28.7%, 49 d, 5.9 cm, 2.8 mm and 0.52 separately. The callus formation time, rooting time, callus rate, root length, root diameter and root quality index of cuttings treated by IBA(100 mg/kg)+ABT1(200 mg/kg) are 14 d, 38 d, 39.8%, 8.1 cm, 4.4 mm and 0.75 respectively, which indicates that the effect of IBA+ABT1 treatment on formation of cali and roots of cuttings of QingxiangJ.regiais better than single IBA treatment.

exogenous hormone; single hormone; combination hormone; QingxiangJuglansregia; callus formation; rooting

2014-10-21; 2015-04-29修回

河北北方学院自然科学研究计划项目“核桃的扦插繁殖技术体系研究”(Q201116)

郑志新(1980-),讲师,硕士,从事植物育苗栽培的教学与研究。E-mail:zjkzzxin@126.com

1001-3601(2015)05-0263-0166-03

S664.1

A

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