膜联蛋白A2对人宫颈癌HeLa细胞增殖、迁移和凋亡的影响
2014-05-16魏建勋马文君李红梅
魏建勋, 马文君, 李红梅
(延安大学附属医院妇产科,陕西延安 716000)
膜联蛋白A2对人宫颈癌HeLa细胞增殖、迁移和凋亡的影响
魏建勋, 马文君, 李红梅△
(延安大学附属医院妇产科,陕西延安 716000)
目的:研究膜联蛋白A2(annexin A2,ANXA2)对人宫颈癌HeLa细胞增殖、迁移和凋亡能力的影响。方法:以HeLa细胞为研究对象,构建过表达载体以及ANXA2-siRNA,转染入细胞。将细胞分为正常对照组、scrambled组、ANXA2过表达组及ANXA2-siRNA组。应用real-time PCR法检测ANXA2 mRNA表达水平及Western blotting检测ANXA2蛋白表达水平。分别采用MTT法、Boyden小室法和流式细胞术观察ANXA2对HeLa细胞增殖、迁移及凋亡能力的影响。结果:ANXA2过表达组可以显著促进HeLa细胞的增殖和迁移;ANXA2-siRNA组明显抑制HeLa细胞的增殖和迁移;ANXA2对HeLa细胞凋亡几乎无影响。结论:沉默ANXA2对人宫颈癌细胞的凋亡无显著影响,但可显著抑制其增殖能力和迁移能力。ANXA2可能在宫颈癌的发生发展中具有十分重要的作用,提示它有可能成为宫颈癌治疗的分子靶点。
膜联蛋白A2;HeLa细胞;细胞增殖;细胞迁移;细胞凋亡
宫颈癌(cervical cancer)是最常见的妇科恶性肿瘤之一,发病率在妇女恶性肿瘤中居第二位,仅次于乳腺癌[1]。随着人们对宫颈癌认识程度的不断加深,防癌普查的广泛开展以及治疗方法的不断改进,发病率和死亡率有所下降,但肿瘤局部未控、复发和转移仍是死亡的主要原因。目前随着分子生物学技术的发展,从基因表达水平研究宫颈癌的发生、发展、诊断及治疗已成为肿瘤研究的热点之一。膜联蛋白A2(annexin A2,ANXA2)是一种钙离子介导的磷脂结合特性的蛋白质,属于膜联蛋白家族成员,广泛分布于胞核、胞浆及细胞质膜外表面[2]。ANXA2作为生长调节因子,与一系列调控细胞生长和分裂的蛋白质相互作用而调控肿瘤生长[3]。ANXA2参与信号转导、细胞迁移、DNA的合成、细胞增殖与凋亡等,与肿瘤发生发展及恶性程度密切相关[4]。研究发现,ANXA2在大多数人类肿瘤,如脑癌、肝癌、乳腺癌、肺癌、结肠癌以及血液肿瘤表达均上调[5],而在食管癌、前列腺癌、鼻咽癌中表达下调[6]。ANXA2的持续激活和异常表达与肿瘤增殖分化、细胞凋亡、新血管生成和免疫逃避密切相关,阻断ANXA2信号转导通路后,多种肿瘤细胞均出现增殖抑制、凋亡增加及侵袭力下降等现象[7]。本研究利用ANXA2基因转染和siRNA干扰技术刺激体外培养的宫颈癌细胞,观察ANXA2过表达和ANXA2-siRNA对宫颈癌细胞增殖、迁移、凋亡能力的变化,进一步明确ANXA2在宫颈癌细胞增殖、迁移、凋亡过程中的作用。
材料和方法
1 材料
1.1 细胞 人宫颈癌细胞株HeLa,购自中国科学院上海细胞库,由本实验室保存。
1.2 主要试剂及仪器 RPMI-1640培养基、胎牛血清、MTT、DMSO、TBST缓冲液和碘化丙啶(propidium iodide,PI)均购自赛默飞世尔生物化学制品有限公司。CO2细胞培养箱(Thermo Forma),酶联免疫检测仪(BioTek),流式细胞仪(BD),Bio-Rad iQ5实时定量PCR仪,激光共聚焦显微镜(Lavision),ECL化学发光试剂盒(Fermentas),BCA蛋白浓度测定试剂盒、RNAiso Plus kit、PrimeScript® RT reagent kit、SYBR® Premix Ex TaqTMII kit、限制性内切酶Nhe I、BamH I和T4连接酶(上海碧云天生物技术有限公司),LipofectamineTMRNAiMAX和抗 ANXA2抗体(Santa Cruz)。
2 方法
2.1 ANXA2基因siRNA序列的设计及转染 siRNA片段由上海生工合成。靶向ANXA2的siRNA上游引物5’-GGGUCUGUCAAAGCCUAUAtt-3’,下游引物3’-ttACCCAGACAGUUUCGGAUA-5’。制备终浓度为80 nmol/L的siRNA-脂质体复合物,实验组加入ANXA2-siRNA混合物,同时设置空白对照组(control)。将HeLa细胞以2×105cells/well接种于6孔板,待细胞生长至70% ~80%时,更换无血清培养基,采用LipofectamineTM2000将ANXA2-siRNA转染细胞。
2.2 表达载体的构建 根据ANXA2序列设计合成一对分别位于ANXA2 cDNA序列上、下两侧的引物,中间包含有完整的ANXA2编码序列,上游引物5’-TATCGCTAGCCAGCTTCCTTCAAA-3’,含有Nhe I酶切位点;下游引物 5’-TGCGGGATCCATTTCTGGACGCTC-3’,含有BamH I酶切位点,引物采用Bioasia公司的自动DNA合成仪合成。提取HeLa细胞总RNA,逆转录合成cDNA,PCR扩增后经Nhe I和BamH I酶切并与质粒pIRES2-GFP的酶切回收产物连接。连接产物经转化感受态大肠杆菌DH5α,涂平板筛选挑取阳性克隆,扩增后提取质粒,酶切产物经电泳观察基因片段的大小。然后挑选酶切鉴定符合的质粒送上海Invitrogen公司进一步测序鉴定。
2.3 RNA的提取与实时定量RT-PCR 以Trizol提取细胞总RNA,按照试剂盒要求操作。按照说明书进行反转录。ANXA2上游引物 5’-GAGGATGGCTCTGTCATTGATT-3’,下 游 引 物 5’-CTGGTAGTCGCCCTTAGTGTCT-3’,检测按实验室常规方法进行PCR扩增。PCR反应条件为:95℃预变性3 min、95℃ 30 s,52℃ 45 s,72℃ 45 s,35个循环;72℃7 min。以ANXA2/β-actin进行定量分析,实验重复3次。
2.4 Western blotting 将培养的细胞用0.05%胰蛋白酶消化,PBS洗涤2次后离心弃上清,加入含全酶抑制剂和PMSF的RIPA裂解液冰浴裂解提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度。制备10%聚丙烯酰胺凝胶,冰浴进行电泳,电泳分离后用半干转法将蛋白转至硝酸纤维素膜上,5%脱脂牛奶室温封闭2 h后加稀释好的抗人ANXA2多克隆抗体4℃孵育过夜,次日PBS 1次、TBST 2次洗膜后加入辣根酶标记的Ⅱ抗室温孵育2 h。洗膜后ECL发光,X光片显影、定影、扫描仪扫描胶片。以β-actin作为内参照。
2.5 细胞增殖实验 取对数生长期细胞接种于96孔板,实验分为正常对照组、scramble组、ANXA2过表达组及ANXA2-siRNA组。细胞贴壁后,弃去旧培养基,加入无血清培养液,放入培养箱孵育24 h。取出培养板,每孔加20 μL MTT,放入培养箱中继续孵育4 h。小心吸弃上清,每孔加入150 μL DMSO,振荡10 min使紫色结晶充分溶解,酶标仪于490 nm处测定各孔A值,记录结果。
2.6 细胞迁移能力测定 将4组细胞(每组大约5×105个)分别悬浮在含有0.2%小牛血清的800 μL培养基中,依次接种至Boyden小室上层,培养6 h。收集迁移到滤膜下层的细胞,用甲醇固定,并通过HE染色来观察下层细胞的数量,最后通过计算滤膜下层的细胞数来评估其转移的细胞数量。
2.7 细胞凋亡测定 取对数生长期的HeLa细胞以1.5×105cells/well接种至 6孔板中,培养 24 h,0.25%胰蛋白酶消化收集细胞,1 000 r/min离心5min沉淀细胞,PBS洗涤2次后1 000 r/min离心沉淀细胞。将10×binding buffer稀释至1×binding buffer,每个样品加入300 μL 1×binding buffer,再加入5 μL Annexin V-FITC,室温避光染色30 min。每个样品加入5 μL PI,避光染色5 min后,再补加200 μL 1×binding buffer,吹打均匀后上机检测细胞凋亡情况。
3 统计学处理
以SPSS 16.0统计软件分析,数据以均数±标准差(mean±SD),组间比较采用方差分析,以P<0.05为差异有统计学意义。
结果
1 ANXA2过表达载体或siRNA转染效果的鉴定
RT-PCR及Western blotting结果见图1,与对照组相比,scramble组HeLa细胞中ANXA2 mRNA及蛋白表达水平几乎无变化,而ANXA2过表达组mRNA及蛋白表达水平显著升高,ANXA2-siRNA组mRNA及蛋白表达水平明显降低(P<0.05)。
Figure 1.The transfection efficiency of ANXA2 overexpression vector or siRNA.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.图1 ANXA2过表达载体或siRNA的转染效果
2 ANXA2对HeLa细胞增殖的影响
MTT法测定结果见图2,与对照组和scramble组相比,ANXA2过表达组可以显著促进HeLa细胞的增殖,ANXA2-siRNA转染组细胞的增殖受到明显的抑制(P<0.05),而对照组和scramble组中HeLa细胞增殖的差异无统计学意义(P>0.05),提示沉默ANXA2能够抑制宫颈癌HeLa细胞增殖。
Figure 2.Effect of ANXA2 on HeLa cell proliferation.Mean± SD.n=3.*P<0.05 vs control.图2 ANXA2对HeLa细胞增殖的影响
3 ANXA2对HeLa细胞迁移的影响
对照组和 scramble组细胞发生迁移数分别为(78.0±5.0)个和(75.0±4.1)个,差异无统计学意义(P>0.05),ANXA2过表达组细胞发生迁移数为(123.0±4.7)个,明显高于对照组,而ANXA2-siRNA转染组细胞发生迁移数为(39.0±3.9)个,明显低于对照组(P<0.05),见图3,表明沉默ANXA2能够抑制宫颈癌HeLa细胞的迁移能力。
Figure 3.Effect of ANXA2 on HeLa cell migration.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control.图3 ANXA2对HeLa细胞迁移的影响
4 ANXA2对HeLa细胞凋亡的影响
流式细胞术检测细胞凋亡结果见图4,与对照组和scramble组相比,ANXA2过表达组和ANXA2-siRNA转染组对HeLa细胞的凋亡无显著影响,表明ANXA2不参与调控宫颈癌HeLa细胞的凋亡。
讨论
Figure 4.Effect of ANXA2 on HeLa cell apoptosis.图4 ANXA2对HeLa细胞凋亡的影响
宫颈癌的发病与多因素的参与有关,但是具体发病机制至今仍不清楚,宫颈癌的发生发展与各种基因突变及基因表达紊乱密切相关[8-9]。而肿瘤的侵袭转移是一个多因素、多步骤的复杂过程,涉及到肿瘤细胞与宿主之间复杂的相互作用,多种基因及其产物参与这一过程的调控。ANXA2在细胞内参与膜形成、膜转运、胞吞、胞吐、细胞增殖、信号转导、分化及凋亡等一系列重要的生命过程。ANXA2在肿瘤中的异常表达与肿瘤的发生、发展、侵袭、转移及预后密切相关[10-11]。研究表明,上调ANXA2基因表达可促进人乳腺癌MCF-7细胞的增殖、迁移和侵袭能力[12]。对人肝癌细胞的研究发现,ANXA2干扰siRNA可以抑制人肝癌细胞的迁移和侵袭[13]。对宫颈癌细胞的研究发现,ANXA2表达水平低的患者对新辅助化疗敏感性增加,表明ANXA2可能是诱导宫颈癌患者抵抗新辅助化疗的一个重要因子,同时,宫颈癌患者基质细胞中ANXA2表达水平高,则生存率降低[14]。但是,关于ANXA2在宫颈癌HeLa细胞发生发展过程中的作用尚未见报道。
本研究通过ANXA2干扰siRNA和ANXA2过表达载体探讨了ANXA2对宫颈癌HeLa细胞增殖、迁移和凋亡能力的影响。我们的研究结果表明,ANXA2对HeLa细胞凋亡基本无影响,沉默ANXA2基因能够降低HeLa细胞的增殖、迁移能力;ANXA2过表达能够增强HeLa细胞的增殖、迁移能力。本实验结果提示,宫颈癌HeLa细胞与生长因子ANXA2的高表达密切相关,ANXA2可以成为宫颈癌治疗的一个新靶点。虽然本研究证实了ANXA2在宫颈癌中发挥着重要作用,但是确切的信号途径尚不清楚,有待于进一步探讨。
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Effect of annexin A2 on proliferation,migration and apoptosis of human cervical cancer HeLa cells
WEI Jian-xun,MA Wen-jun,LI Hong-mei
(Department of Obstetrics and Gynaecology,Affiliated Hospital of Yanan University,Yanan 716000,China.E-mail:submission029@gmail.com)
AIM:To explore the effect of annexin A2(ANXA2)on the proliferation,migration and apoptosis abilities of human cervical cancer HeLa cells.METHODS:Overexpression vectors and siRNA of ANXA2 were constructed,and then transfected into HeLa cells.The HeLa cells were divided into 4 groups:control group,scramble group,ANXA2 overexpression group and ANXA2-siRNA group.The expression of ANXA2 at mRNA and protein levels was examined by real-time PCR and Western blotting.MTT assay,Boyden chamber and flow cytometry were used to determine the effect of ANXA2 on the proliferation,migration and apoptosis abilities of the HeLa cells.RESULTS:The proliferation and migration of HeLa cells were obviously promoted by ANXA2 overexpression.The proliferation and migration of HeLa cells were remarkably inhibited by the transfection of ANXA2-siRNA.ANXA2 had no effect on apoptosis of HeLa cells.CONCLUSION:Silencing of ANXA2 effectively inhibits the proliferation and migration of cervical cancer cells,but has little effect on apoptosis.ANXA2 may play a pivotal role in the occurrence and development of cervical cancer,and may be used as a molecular target for the treatment of cervical cancer.
Annexin A2;HeLa cells;Cell proliferation;Cell migration;Apoptosis
R737.33
A
10.3969/j.issn.1000-4718.2014.03.029
1000-4718(2014)03-0547-04
2013-10-31
2014-01-13
△通信作者Tel:0911-2881213;E-mail:submission029@gmail.com