MRL/lpr狼疮鼠骨TNF-α/NF-κB信号通路的表达
2014-04-14崔婷宋冬明裘影影芮金兵吴玲费小明李晶汤郁
崔婷,宋冬明,裘影影,芮金兵,吴玲,费小明,李晶,汤郁
(江苏大学附属医院1.风湿科,2.血液科,江苏镇江212001)
MRL/lpr狼疮鼠骨TNF-α/NF-κB信号通路的表达
崔婷1,宋冬明1,裘影影1,芮金兵1,吴玲1,费小明2,李晶1,汤郁1
(江苏大学附属医院1.风湿科,2.血液科,江苏镇江212001)
目的:探讨系统性红斑狼疮小鼠(MRL/lpr)骨肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)/细胞核因子-κB p50(nuclear factor-κB p50,NF-κB p50)信号通路的表达。方法:选取C3He/HeJ小鼠(对照组)和MRL/lpr狼疮小鼠(狼疮组)各6只,饲养4个月后常规制备小鼠股骨组织切片,HE染色观察骨质情况,免疫组织化学染色检测TNF-α、NF-κB p50蛋白表达情况;密度梯度离心法分离和贴壁法筛选骨髓间充质干细胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMMSCs),然后培养;免疫细胞化学染色观察BMMSCs中TNF-α、NF-κB p50表达情况。结果:与对照组比较,狼疮组小鼠骨小梁松散,出现骨质疏松,股骨TNF-α和NF-κB p50蛋白表达升高(P<0.05或P<0.01),BMMSCs中TNF-α和NF-κB p50蛋白表达亦升高(P<0.05或P<0.01)。结论:狼疮鼠骨TNF-α/NF-κB信号通路处于异常活化状态。
系统性红斑狼疮;间充质干细胞;TNF-α/NF-κB信号通路
系统性红斑狼疮(systemic lupus erythematosus,SLE)是一种慢性的、系统性自身免疫病,累及全身多系统,包括肾脏、心血管系统、神经系统、骨骼肌和皮肤等。近年来,随着狼疮治疗水平的提高,患者的生存率也大幅度提高,但骨质疏松成为影响患者生活质量的主要问题之一[1]。骨质疏松症是一种以骨量减少,骨的微细结构改变,骨的脆性增加致骨折发生率增加为特点的代谢病。骨代谢涉及多种信号通路,如细胞核因子-κB(nuclear factor-κB,NF-κB)信号通路、骨形态发生蛋白(bonemorphogenetic protein,BMP)/Smad信号通路、有丝分裂原激活蛋白激酶(MAPK)信号通路等。研究表明,SLE患者骨质疏松症发病率高[2]。炎症是导致SLE患者发生骨质疏松的主要原因之一。目前研究发现,TNF-α、IL-10等炎症因子主要通过细胞内外的信号通路作用于破骨细胞,致其过度活化,进而造成骨质疏松[3]。但目前关于炎症对SLE患者成骨细胞影响的研究甚少。因此,本研究旨通过动物实验探讨SLE骨TNF-α/NF-κB信号通路的改变。
1 材料与方法
1.1 动物
MRL/lpr雌性狼疮小鼠6只(狼疮组),6~7周龄,体质量(22.1~26.0)g,平均(24.2±0.5)g,购于上海斯莱克实验动物有限公司,动物合格证号:2007000560799。C3He/HeJ雌性小鼠6只(对照组),6~7周龄,体质量(23.6~25.2)g,平均(24.7 ±0.7)g,购于南京大学模式动物实验室,动物合格证编号201302035。小鼠均饲养于江苏大学动物实验中心,自由进食、饮水,饲养条件相同,共4个月。
1.2 主要试剂、仪器
PBS(pH=7.4)、低糖DMEM、胎牛血清(Gibco公司);10%EDTA脱钙液购自北京罗基生物公司;兔抗鼠TNF-α多克隆抗体(Abcam公司);兔抗鼠细胞核因子-κB p50(nuclear factor-κB p50,NF-κB p50)多克隆抗体(Santa Cruz公司);兔源HRP标记二抗购自福州迈新公司;细胞用玻片、24孔板(Corning公司)。
1.3 方法
1.3.1 骨组织HE染色 两组小鼠采用过量乙醚吸入法处死。取左侧股骨,剔除多余的肌肉组织,10%甲醛固定24 h,转移至脱钙液中,30 d后取出骨头,制成4μm石蜡切片。切片脱蜡至水,伊红染5 min,苏木素染1 min,流水冲洗、盐酸分化、温水返蓝、梯度乙醇脱水、二甲苯透明、中性树胶封片,置于显微镜下观察并拍照。
1.3.2 骨组织免疫组织化学染色 切片脱蜡至水,PBS洗3次,5 min/次。3%H2O2封闭内源性过氧化物酶10 min,PBS冲洗5 min,3次。室温下0.4%胃蛋白酶修复20 min,PBS洗3次,5 min/次。正常山羊血清室温封闭20 min。分别滴加抗TNF-α、NF-κB p50一抗4℃过夜,PBS洗3次,5 min/次。滴加二抗室温孵育30 min,PBS洗3次,5 min/次。滴加DAB,3min后自来水终止显色。苏木素复染1 min,分化、返蓝、脱水、透明、封片,置于显微镜下观察并拍照。
1.3.3 骨髓间充质干细胞(bonemarrow mesenchymal stem cells,BMMSCs)分离培养 采用密度梯度离心法和贴壁筛选法分离培养小鼠股骨BMMSCs。具体方法详见文献[4]。
1.3.4 BMMSC免疫细胞化学染色 取两组小鼠右侧股骨骨髓,冲洗,得到的细胞用含15%胎牛血清的低糖DMEM培养,融合度达80%时用胰酶消化原代细胞并传代培养,取第3代细胞做细胞玻片。24 h后弃培养液,10%甲醛固定15 min,PBS洗2次,0.5%Triton X-100孵育20 min,PBS洗2次。3% H2O2孵育15 min,PBS洗2次。正常山羊血清室温封闭20 min。分别滴加抗TNF-α、NF-κB p50一抗4℃过夜。PBS洗2次,滴加二抗室温孵育30 min。PBS洗2次。DAB显色3min,自来水终止显色。苏木素复染1 min,分化、返蓝、脱水、透明、封片,置于显微镜下观察并拍照。
1.4 统计学分析
采用IPP软件摄影,计算两组小鼠骨皮质厚度和骨小梁占髓腔体积的百分比;采用SPSS 16.0进行统计分析,数据以均数±标准差±s)表示。方差齐时采用独立样本t检验分析,方差不齐采用非参数统计分析。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 MRL/lpr小鼠骨组织结构
紧贴骨软骨下取一块组织计算骨松质占骨组织体积比,结果显示,狼疮组小鼠骨小梁占骨组织体积百分比为(21.94±3.01)%,对照组小鼠为(26.96± 3.14)%,狼疮组骨小梁较对照组松散(t=2.827,P<0.05)。见图1。
2.2 两组小鼠骨TNF-α、NF-κB p50蛋白表达
免疫组织化学染色结果显示,狼疮组小鼠股骨TNF-α、NF-κB p50蛋白表达明显高于对照组,定量分析显示同样结果。见图2和图3。
2.3 BMMSCs形态
两组小鼠BMMSCs原代培养48 h可见散在贴壁细胞,培养96 h时可见大量放射状的长梭形细胞,符合BMMSCs的形态特征。两组细胞形态无明显差别。见图4。
2.4 两组BMMSCs中TNF-α和NF-κB p50表达
结果显示,狼疮组小鼠BMMSCs胞质、胞核棕色成分明显多于对照组小鼠。定量分析结果显示,狼疮组TNF-α和NF-κB p50蛋白表达明显高于对照组(P<0.05或P<0.01)。见图5和图6。
3 讨论
本实验结果显示,狼疮组小鼠骨小梁排列紊乱,骨皮质减少,存在骨质疏松,与Sun等[5]实验结果一致;免疫组化结果进一步显示狼疮组小鼠股骨TNF-α及NF-κB p50表达高于对照组。但从原位的骨组化,尚不能清楚地区分在组成骨的多种细胞中,包括成骨细胞、破骨细胞、间充质干细胞(MSCs),具体是哪一种细胞的蛋白表达减弱。
本实验进一步分离小鼠的BMMSCs,免疫组化染色结果显示,狼疮组TNF-α、NF-κB p50蛋白表达明显高于对照组,间接提示狼疮组小鼠BMMSCs NF-κB信号通路处于较为活化的状态,可能与其处于高TNF-α的炎症环境有关。
成骨细胞来源于BMMSCs。有研究表明,TNF-α可促进BMMSCs成骨分化[6];也有研究表明,TNF-α可抑制BMMSCs成骨分化[7-9]。前者主要通过NF-κB或者MAPK信号通路来实现[6]。NF-κB信号通路是细胞内参与代谢尤其是骨代谢的一条重要的信号通路,NF-κB p50是该信号通路的重要分子;细胞外的信号分子通过作用于细胞膜上的相应受体,引起细胞一系列的分子变化,进而引起NF-κB p50转位入核,诱导BMMSCs与成骨相关基因的表达。因此,本实验也提示SLE患者骨质疏松的形成可能是由于BMMSCs向成骨细胞分化时,致炎因子改变了信号通路的活性所致。
总之,本研究提示狼疮鼠存在骨质疏松,其骨及BMMSCs NF-κB信号通路活化,骨TNF-α增高,为进一步阐释SLE致骨质疏松的机制提供了依据,也为临床上对SLE患者的靶向治疗提供了参考。限于本实验的研究条件,未能检测NF-κB信号通路上其他分子表达量的变化,其他致炎因子对通路的影响,以及该信号通路与其他信号通路的相互作用。因此,还需要进一步实验来揭示狼疮鼠BMMSCs活化的NF-κB与骨质疏松的因果关系。
[1] García-Carrasco M,Mendoza-Pinto C,Escárcega RO,et al.Osteoporosis in patients with systemic lupus erythematosus[J].Isr Med Assoc J,2009,11(8):486-491.
[2] Tang Y,Xie H,Chen J,et al.Activated NF-κB in bonemarrow mesenchymal stem cells from systemic lupus erythematosus patients inhibits osteogenic differentiation through downregulating Smad signaling[J].Stem Cells Dev,2013,22(4):668-678.
[3] Tanaka Y.Secondary osteoporosis or secondary contributors to bone loss in fracture.The relevance of immune system to bonemetabolism[J].Clin Calcium,2013,23(9):1265-1270.
[4] He X,Dziak R,Yuan X,etal.BMP2 genetically engineered MSCs and EPCs promote vascularized bone regeneration in rat critical-sized calvarial bone defects[J].PLoSONE,2013,8(4):e60473.
[5] Sun L,Akiyama K,Zhang H,et al.Mesenchymal stem cell transplantation reverses multiorgan dysfunction in systemic lupus erythematosus mice and humans[J].Stem Cells,2009,27(6):1421-1432.
[6] Hess K,Ushmorov A,Fiedler J,et al.TNFαpromotes osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells by triggering the NF-κB signaling pathway[J].Bone,2009,45(2):367-376.
[7] Tsukahara S,Ikeda R,Goto S,et al.Tumour necrosis factorα-stimulated gene-6 inhibits osteoblastic differentiation of humanmesenchymal stem cells induced by osteogenic differentiation medium and BMP-2[J].Biochem J,2006,398(3):595-603.
[8] Mukai T,Otsuka F,Otani H,et al.TNF-αinhibits BMP-induced osteoblast differentiation through activating SAPK/JNK signaling[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,356(4):1004-1010.
[9] David JP,Schett G.TNF and bone[J].Curr Dir Autoimmun,2010,11:135-144.
Expression of TNF-α/NF-κB signaling pathway in the bone of system ic lupus erythematosusm ice(MRL/lpr)
CUITing1,SONG Dong-ming1,QIU Ying-ying1,RUIJin-bing1,WU Ling1,FEIXiao-ming2,LIJing1,TANG Yu1
(1.Department of Rheumatology and Immunology,2.DepartmentofHematology,the Affiliated Hospitalof Jiangsu University,Zhenjiang Jiangsu 212001,China)
Objective:To investigate the tumor necrosis factor-α(TNF-α)/nuclear factor-κB p50(NF-κB p50)signaling pathway in bone of systemic lupus erythematosus mice(MRL/lpr).M ethods:Six C3He/HeJmice(control group)and six MRL/lprmice(lupus group)were feed,thenmouse femur tissue sectionswere prepared and bone circumstances were observed by hematoxylin-eosin(HE)staining.The proteins of TNF-αand NF-κB p50 were detected by immunohistochemical staining.Bonemarrowmesenchymal stem cells(BMMSCs)were isolated by density gradient centrifugation adherence screeningmethod and cultured,then the expressions of TNF-α,NF-κB p50 were detected by immunocytochemistry staining.Results:Trabecular bone of MRL/lpr lupusmice showed osteoporosis and the percentage of the cortex to the volume of bone of MRL/lprmice were significantly lower compared to control group(P<0.05).The protein expression levels of TNF-αand NF-κB p50 on the femur of MRL/lprmice were higher than the C3He/HeJmice(P<0.05 or P<0.01).Immunocytochemistry results displayed that on the BMMSCs of the MRL/lprmice,the protein expression levels of TNF-αand NF-κB p50 were also higher than the C3He/HeJmice(P<0.05 or P<0.01).Conclusion:TNF-α/NF-κB signaling pathway on the bone of lupusmice has been abnormally activated.
systemic lupus erythematosus;mesenchymal stem cells;TNF-α/NF-κB signaling pathway
国家自然科学基金资助项目(81202358);镇江市社会发展项目(SH2013028);镇江市学术技术带头人专项基金资助项目
崔婷(1987—),女,硕士研究生;汤郁(通讯作者),副主任医师,硕士生导师,E-mail:cattlemouse@sohu.com
R593.24
A
1671-7783(2014)05-0380-04
10.13312/j.issn.1671-7783.y140212
2014-07-23 [编辑] 刘星星