赭曲霉毒素A的微生物脱毒研究进展
2014-03-22贾欣徐诗涵梁志宏黄昆仑
贾欣 徐诗涵 梁志宏 黄昆仑
(中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京 100083)
赭曲霉毒素A的微生物脱毒研究进展
贾欣 徐诗涵 梁志宏 黄昆仑
(中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京 100083)
赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)是一类聚酮化合物,是由曲霉属(Aspergillus spp.)和青霉属(Penicillium spp.)等霉菌产生的次级代谢产物,具有强烈毒性。近年来,国内外已有大量关于OTA生物脱毒的研究,主要是OTA脱毒功能菌株的筛选,包括细菌、霉菌和酵母菌等。此外,对不同微生物脱毒机理的探索也是研究热点。对上述两方面的研究进展进行归纳和讨论。
生物脱毒 赭曲霉毒素A 细菌 真菌 肠道微生物
随着人们生活水平的提高,食品安全问题日益受到重视。谷物食品是人类日常维持生命的基本物质,尤其在东方膳食体系中占据重要位置。全球大约25%的粮食作物受到霉菌毒素的污染(FAO),如黄曲霉和赭曲霉等。赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)是由曲霉属(Aspergillus spp.)和青霉属(Penicillium spp.)等霉菌产生的次级代谢产物,属于聚酮类化合物,主要存在于谷物及其副产品中[1]。OTA具有强烈的肾脏毒性和肝脏毒性,并有致畸、致突变和致癌作用,对动物和人体健康有很大的潜在危害,研究OTA的脱毒对人类健康至关重要[2]。
近年来,国内外有关OTA脱毒的研究很多。OTA的脱毒方法主要有化学脱毒、物理吸附和生物脱毒,且目前比较成熟的技术主要为化学脱毒和物理吸附。但化学脱毒和物理吸附因存在副作用、费用较高、影响食品的风味和营养等原因不利于推广应用[3]。生物脱毒越来越引起人们的关注。生物脱毒是利用微生物作用去除毒素毒性,副作用小,环境友好,是一种非常理想的脱毒方法,现成为世界各国竞相研究的热点[4]。本文主要从近年来对细菌、真菌及其他一些不明确的OTA脱毒微生物的筛选和脱毒机理等方面,对OTA生物脱毒的研究进行综述。特别是肠道微生物对OTA的脱除,因其能在动物肠道发挥作用,减少体内OTA对机体的危害,因而具有更大的研究价值和应用前景。
1 细菌脱除OTA及其机理探究
目前,关于细菌脱毒的研究主要在乳杆菌(Lactobacillus spp.)、芽孢杆菌(Bacillus spp.)、短杆
菌(Brevibacterium spp.)和不动杆菌(Acinetobacter spp.)等类群中。脱除作用的主要表现是对OTA的吸附和降解,包括利用OTA作为生长繁殖的物质基础。
1.1 乳杆菌(Lactobacillus spp.)脱除OTA及其机理研究
Böhm等[5]对益生菌的OTA脱毒能力研究表明,对OTA有脱毒能力的菌种主要是乳杆菌。其中2株L-保加利亚乳杆菌(L. bulgaricus)的脱毒率分别为94%和28.5%,L-瑞士乳杆菌(L. helveticus)达到72%。由乳酸菌发酵生产的酸奶能减少OTA的含量。嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)、德氏乳杆菌(L. delbrueckii)、保加利亚菌(Bulgaria bacteria)及双歧杆菌(Bifidobacterium)所发酵的酸奶中都未检出OTA,但也没有降解产物的产生。Fuchs等[6]研究了乳杆菌对OTA的脱除,证实一株嗜酸乳杆菌(L. acidophilus)对OTA有高效吸附能力,吸附率大于95%,且L. acidophilus对OTA的吸附受毒素的浓度、pH值、细胞密度和菌株生长等影响。用人的派生肝癌细胞株HepG2进行微核试验表明,该菌株能大幅度减少OTA。Del Prete等[7]将15种与酒相关的Lactobacillus spp.培养在含有OTA的液体合成培养基中,在菌株生长期间OTA减少了8%-28%,而OTA减少量的31%-57%在细胞沉淀中得到恢复,该类菌株对OTA的确具有吸附脱毒作用。
1.2 芽孢杆菌脱除OTA及其机理研究
近年来越来越多关于芽孢杆菌脱毒能力的研究,证明了芽孢杆菌具有OTA脱毒能力。Ptechkongkaew等[8]对泰国纳豆中芽孢杆菌进行研究,表明地衣芽孢杆菌(B. licheniformis)具有强OTA降解能力,48 h可以将81%的OTA降解为OTα。李之佳[9]研究了Bacillus spp.对OTA的降解作用,表明2种芽孢杆菌——Bacillus sp. YB139和Bacillus sp. YB140的OTA降解率分别为48.2 %和43.4 %,2种菌的活菌均能有效降解OTA,而高温灭活菌无脱毒能力,表明这些菌株的脱毒机理为生物降解。
本实验室中,师磊等[10]进行了非致病枯草芽孢杆菌(B. subtilis)对OTA的生物控制和脱毒的研究。结果表明,Bacillus spp.能抑制赭曲霉(Aspergillus ochraceus)和炭黑曲霉(Aspergillus carbonarius)的生长,活菌和高温灭活菌(121℃,20 min)均能吸附OTA。此外,OTA能够被B. subtilis菌液上清降解。
1.3 其他细菌脱除OTA及其机理研究
Wegst和Lingens[11]研究了不动苯基杆菌(Phenylobacterium immobile)对OTA的脱毒能力,通过薄层色谱和高效液相色谱(HPLC)技术,分离纯化出4种降解产物,且其毒性远小于OTA。梁晓翠[12]、李之佳[9]对不动杆菌(Acinetobacter spp.)对OTA的脱毒的研究表明Acinetobacter spp.具有较强的脱毒能力,24 h内脱毒率达到80%以上,高效液相色谱检测出降解产物OTα,但灭活的菌无脱毒能力,表明Acinetobacter spp.脱毒机理为生物降解。同时对Acinetobacter spp.的脱毒特性及降解酶的性质研究表明,其降解OTA的时间曲线符合酶促反应的特征,降解速率随体系中OTA浓度的下降而逐渐减小;菌体浓度越大,脱毒能力越强。金属离子螯合剂EDTA能抑制降解酶的活性,而羧肽酶抑制剂不能抑制它的活性,说明降解酶是一种与羧肽酶A(Carboxypeptidase A,CPA)性质不同的金属酶。此外,Rodriguez等[13]对短杆菌(Brevibacterium spp.)脱除OTA的能力和机理进行研究,证实Brevibacterium spp.具有降解OTA的能力(图1)。在含高浓度OTA(40 μg/L)的BSM培养基上培养不同的 Brevibacterium spp.,所有培养基上清液中OTA完全消失且在菌和菌的清洗液中没有检测到OTA。2种Brevibacterium spp.能够完全降解高浓度(40 mg/L)的OTA生成OTα和L-苯基丙氨酸,且L-苯基丙氨酸不会进一步被短杆菌转化,表明Brevibacterium spp.具有一种酶,可能是CPA,能水解OTA的酰胺键。对上清的HPLC分析表明L-苯基丙氨酸的浓度符合假设的理论浓度。这些结果表明,OTA的酰胺键能够被CPA酶促水解,产生L-苯基丙氨酸和OTα,且没有其他有毒降解产物产生。María等[14]在2011年申请了关于Brevibacterium spp.将OTA降解为OTα的专利,证明短杆菌属具有降解OTA的能力,降解产物为OTα,且将OTA作为唯一碳源。
此外,有关根瘤菌(Rhizobium)对OTA的脱毒研究[15]表明,Rhizobium具有降解OTA的能
力,降解率可达25.1%,且降解与酶有关;溶纤维丁酸弧菌(Butyrivibrio fibrisolvens)在某种程度上能对OTA进行脱毒,乙酸钙不动杆菌(Acinetobacter calcoaceticus)和苯基不动杆菌(Phenyl acinetobacter)可在液体培养基中将OTA降解为的OTα[16]。
图1 OTA的降解反应
综上所述,在对细菌OTA脱除能力的研究中,有关Lactobacillus spp.对OTA的作用机理目前还存有争议,有人认为是Lactobacillus spp.产生某种酶而引起某些代谢变化所导致的降解作用[6],也有人认为是细胞吸附作用,但吸附的化学和分子机理仍不清楚[7]。而Bacillus spp.对OTA的脱毒作用的认识,目前多倾向于将其归为降解作用,Ptechkongkaew[8]认为是CPA对OTA的水解作用使OTA脱毒,李之佳[9]同样认为是酶的作用,但提出是不同与羧肽酶的一种金属酶,师磊等[10]却未在菌液中检测到OTA的降解产物,对于其脱毒机理有待于进一步深入研究。对上述具有脱除OTA能力的细菌进行归纳总结,见表1。
表1 脱除OTA的细菌及作用机理
2 真菌脱除OTA及其机理探究
关于真菌对OTA生物脱毒的研究较细菌透彻,主要集中在酵母和霉菌上,未见食用菌脱除OTA的报道。Varga等[17]对产虾青素的红发夫酵母(Phaffia yeast)进行了OTA的脱毒研究。在20℃下孵育15 d后,P. yeast可以降解90%以上的OTA,降解产物为OTα,且这种转变可能与CPA有关。此外,活菌和高温灭活菌能吸附大部分的OTA。但Cecchini等[18]对白酒和红酒中酵母的脱毒研究表明酵母没有降解OTA的能力。试验未检测到降解产物,在发酵过程中OTA的脱除可能是吸附作用,并且OTA可能不可恢复地吸附细胞表面。这种说法在其他试验中得到证明。如Csutorás等[19]用高浓度毒素在不同酒发酵过程中OTA浓度变化的研究,结果表明酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)能吸附90% OTA,且减少率与酒的种类有关,但差别不显著;Marco等[20]通过监测酒在发酵过程中OTA浓度的变化,同样得出Saccharomyces cerevisiae(Zymaflor VL3和VIN7)可以降低酒中OTA的浓度,吸附率在57%-79%之间。Gil-Serna等[21]对汉氏德巴利氏酵母(Debaryomyces hansenii)CYC1244对OTA的脱毒机理进行了研究。首先他们确定D. hansenii CYC1244可以抑制OTA产毒霉菌的生长和OTA的生物合成,从而提出3种脱毒机理:其一是影响OTA的生物合成;其二是OTA被吸附在酵母细胞壁或吸附进入酵母细胞内;其三是D. hansenii CYC1244降解OTA。研究表明,D. hansenii CYC 1244影响OTA的基因表达水平,当产毒霉菌与D. hansenii CYC1244共培养时OTA明显减少。进一步研究表明,OTA被D. hansenii CYC1244
细胞壁吸附更可能导致OTA减少,且pH值是影响OTA吸附的最大因素,在pH为3时吸附率最大(>98%);而pH为5和7时,吸附率分别为63%和65%,这表明低pH能提高D. hansenii CYC1244对毒素的吸附。D. hansenii CYC 1244对OTA无降解作用,且与孵育时间无关。即确定D. hansenii CYC 1244对OTA的作用主要为前两种机制,而OTA被吸入细胞内或被降解则没有理论依据。
综上所述,酵母对OTA的脱毒机理涉及到影响OTA的合成、降解和吸附,不同的种对OTA的作用不同,但大都倾向于是一种吸附作用[18-21]。
Bejaoui等[22]研究了黑曲霉菌(Aspergillus niger)对OTA的脱毒能力。几乎所有A.niger脱除OTA的能力在某些情况下均可达到98%-99%,A.niger能将OTA水解为OTα,在相同和不同种群间观察到的差异取决于培养基的种类。试验表明,A.niger是对OTA降解能力最大的菌种,5 d内降解率为99%。Bejaoui等[23]通过A. niger活菌和高温灭活菌的分生孢子对OTA的脱毒试验表明,A. niger的分生孢子对OTA的生物脱除是一个二级现象。第一阶段 OTA全部被A. niger的分生孢子吸附,且高温灭活的孢子也有这种能力,最后未产生OTA的降解产物。第二阶段,OTA的降解只与有活性的分生孢子有关。在含有A. niger菌丝的培养基中培养一段时间后,可检测到OTα,说明OTA发生了降解。而Stander等[24]对A. niger中的OTA降解酶进行筛选得到一种粗脂肪酶能降解OTA,可能是粗脂肪酶中的蛋白酶和酰胺酶起了降解作用,将OTA降解为OTα。研究表明CPA能水解OTA及其类似物,形成苯丙氨酸[25]。
有关A. niger对OTA的生物脱毒普遍认为是酶的作用,但在实际应用中缺乏更多的研究。如脱毒是否对原料物性有影响,若采用A. niger菌体进行脱毒应用,其产生的黑色色素是否会影响食品的正常颜色和风味等,这些问题都有待进一步的研究。
还有涉及其他真菌对OTA脱毒的研究,如Engelhardt[26]对白腐真菌(White rot fungus)的研究表明,属于White rot fungus的粗皮侧耳菌(Pleurotus ostreatus)对OTA有降解能力。在固体发酵培养基上,能将OTA水解为OTα,降解率为77.3%;de Felice等[27]对出芽短梗霉菌(Aureobasidium pullulans)、Varga等[15]对根霉菌(Rhizopus bacteria)的脱毒研究表明,出芽短梗霉菌和根霉均有OTA脱毒作用,但都没有涉及到脱毒机理的研究。对以上具有OTA脱除能力的真菌及其作用机理进行归纳总结,见表2。
表2 脱除OTA的真菌及作用机理
3 脱除OTA的肠道微生物
很多实验涉及到肠胃道微生物对OTA的脱毒能力研究,得到具有OTA降解能力的肠道菌群,这为筛选适用于粮食中的OTA脱毒菌种提供丰富资源,并且由于其本身对肠道环境的适应性,对生物肠道无危害性,更为其在粮食中的应用奠定了基础。
Varga等[16]对动物体内曲霉属真菌的脱毒研究表明,反刍动物瘤胃中的微生物可以降解OTA,人类胃肠道中也有菌种可以降解OTA。Upadhayaa等[28]对猪的肠道微生物进行了分离、筛选和鉴定,研究其对OTA的降解能力。研究表明猪的肠道菌群中分离出的一种厌氧菌对OTA有很强的降解能力。在体外固体发酵培养基上,该菌24 h后能完全降解OTA。Madhyastha等[29]对鼠肠道微生物的研究表明鼠肠道微生物可以将OTA水解为毒性较小的OTα,且大肠和盲肠是OTA水解的主要场所。Mobashar等[30]研究了瘤胃中的微生物种群对OTA降解能力和饮食对OTA降解的影响,结果表明瘤胃微生物和饮食都会影响OTA的降解。瘤胃微生物中主要是细菌有较高的降解OTA的能力,一些原生生物似乎也有一定的降解能力,而饮食对原生生物的数量有一个二次效应,从而影响到OTA的降解。Camel等[31]对人肠道微生物对OTA的降解能力的研究表明,在含OTA的培养基中培养人肠道微生物,OTA的平均
降解率为47%和34%。分离纯化得到3种降解产物,分别为OTα,OTB和OP-OTA(开环OTA)(图2)。OTα和OTB的毒性均小于OTA,但OP-OTA的毒性却大于OTA。有很多研究已证实OTα为OTA的一种降解产物,然而对于OTB和OP-OTA的报道少之又少。这项研究启示人们去研究OTA的降解途径并阻断OTA转变为OP-OTA的途径。这些将成为未来研究的热点。
图2 人的肠道微生物对OTA的降解
4 展望
粮食与饲料的真菌毒素污染问题是全球性的难题,目前利用微生物和微生物酶脱除真菌毒素与物理、化学方法脱毒相比,具有材料容易获得和扩培,环境友好,易于应用等优势,具有很好的应用前景。生物脱除OTA的各种微生物中,细菌以其数量庞大,代谢途径多样可能成为未来首选。该领域前期研究获得能够降解OTA的细菌种类也远远高于酵母菌和霉菌。目前对微生物脱除OTA的机理研究主要集中在微生物产生的蛋白类肽类和蛋白酶对OTA的作用,已有研究结果证实蛋白酶能将OTA转化为毒性很小的OTα,从而达到脱毒的目的。但目前大多数对OTA的脱毒研究局限于脱毒菌种的分离与筛选,而对脱毒菌株OTA降解酶研究得很少,在已有研究的基础上,进一步利用一定的现代分离技术,从脱毒菌株中获得高纯度的OTA降解酶,分析其蛋白结构及作用机制;找出降解酶对应的编码基因,利用基因工程手段进行高效表达,并利用酶工程手段提高酶的稳定性,制成酶制剂;或通过基因工程手段获得更高降解效率、可用于实际脱毒的高效菌株,
[1]Abrunhosa L, Santos L, Venancio A. Degradation of ochratoxin a by proteases and by a crude enzyme of Aspergillus niger[J]. Food Biotechnology, 2006, 20(3):231-242.
[2]Ciconová P, Laciaková A, Máté D. Prevention of ochratoxin a contamination of food and ochratoxin a detoxification by microorganisms-a review[J]. Czech Journal of Food Sciences, 2010, 28:465-474.
[3]Varga J, Kocsube S, Peteri Z, et al. Chemical, physical and biological approaches to prevent ochratoxin induced toxicoses in humans and animals[J]. Toxins, 2010, 2(7):1718-1750.
[4]Quintela S, Ma CV, Lopez de Armentia Ir, et al. Ochratoxin a removal in wine:a review[J]. Food Control, 2013, 30(2):439-445.
[5]Böhm J, Grajewski J, Asperger H, et al. Study on biodegradation of some a-and b-trichothecenes and ochratoxin a by use of probiotic microorganisms[J]. Mycotoxin Research, 2000, 16(1):70-74.
[6]Fuchs S, Sontag G, Stidl R. et al. Detoxification of patulin and ochratoxin A, two abundant mycotoxins, by lactic acid bacteria[J]. Food and Chemical Toxicology, 2008, 46(4):1398-1407.
[7]Del Prete V, Rodriguez H, Carrascosa AV, et al. In vitro removal
of ochratoxin a by wine lactic acid bacteria[J]. Journal of Food Protection, 2007, 9(70):2155-2160.
[8]Petchkongkaew A, Taillandier P, Gasaluck P, et al. Isolation of Bacillus spp. from Thai fermented soybean(Thua-nao):screening for aflatoxin B1 and ochratoxin detoxification[J]. Journal of Applied Microbiology, 2008, 104(5):1364-5072.
[9]李之佳.细菌对赭曲霉毒素A的脱毒研究[D]. 上海:上海交通大学, 2011:1-86.
[10]师磊, 梁志宏, 徐诗涵, 等. 一株地衣芽孢杆菌对赭曲霉毒素A的吸附和降解研究[J]. 农业生物技术学报, 2013, 21(12):1420-1425.
[11]Wegst W, Lingens F. Bacterial degradation of ochratoxin A[J]. FEMS Microbiology Letters, 1983, 17(1-3):341-344.
[12]梁晓翠.不动杆菌BD189对赭曲霉毒素A的脱毒研究[D].上海:上海交通大学, 2010:1-102.
[13]Rodriguez H, Reveron I, Doría F, et al. Degradation of ochratoxin a by Brevibacterium species[J]. Agric Food Chem, 2011, 59:10755-10760.
[14]María R, Héctor R, Blanca D, et al. Biological degradation of ochratoxin a into ochratoxin alpha:US, 2013/0209609 A1[P]. 2013-8-15.
[15]Varga J, Péteri Z, Tábori K, et al. Degradation of ochratoxin A and other mycotoxins by Rhizopus isolates[J]. International Journal of Food Microbiology, 2005, 99(3):321-328.
[16]Varga J, Rigó K, Téren J. Degradation of ochratoxin A by Aspergillus species[J]. Int J Food Microbiol, 2000, 59(1-2):1-7.
[17]Varga J, Peteri Z, Teren J. et al. Ochratoxin degradation and adsorption caused by astaxanthin-producing yeasts[J]. Food Microbiology, 2007, 24(3):205-210.
[18]Cecchini F, Morassut M, Garcia Moruno E, Di Stefano R. Influence of yeast strain on ochratoxin A content during fermentation of white and red must[J]. Food Microbiology, 2006, 23(5):411-417.
[19]Csutorás CS, Racz L, Racz K, et al. Monitoring of ochratoxin A during the fermentation of different wines by applying high toxin concentrations[J]. Microchem J, 2013, 107(SI):182-184.
[20]Marco E, Ilaria B, Katia L, et al. Monitoring of ochratoxin A fate during alcoholic fermentation of wine-must[J]. Food Control, 2012, 27(1):53-56.
[21]Gil-Serna J, Patiño B, Cortés L, et al. Mechanisms involved in reduction of ochratoxin A produced by Aspergillus westerdijkiae using Debaryomyces hansenii CYC 1244[J]. International Journal of Food Microbiology, 2011, 151(1):113-118.
[22]Bejaoui H, Mathieu F, Taillandier P, et al. Biodegradation of ochratoxin A by Aspergillus section Nigri species isolated from French grapes:a potential means of ochratoxin A decontamination in grape juices and musts[J]. FEMS Microbiology Letters, 2006, 255(2):203-208.
[23]Bejaoui H, Mathieu F, Taillandier P, et al. Ochratoxin A removal in synthetic and natural grape juices by selected oenological Saccharomyces strains[J]. J Appl Microbiol, 2004, 97(5):1038-1044.
[24]Stander MA, Bornscheuer UT, Henke E. Screening of commercial hydrolases for the degradation of ochratoxin A[J]. Agricultural and Food Chemistry, 2000, 48(11):5736-5739.
[25]Stander MA, Steyn PS, van der Westhuizen FH, et al. A kinetic study into the hydrolysis of the ochratoxins and analogues by carboxypeptidase A[J]. Chem Res Toxicol, 2001, 14(3):302-304.
[26]Engelhardt G. Degradation of ochratoxin A and B by the white rot fungus Pleurotus ostreatus[J]. Mycotoxin Res, 2002, 18:37-43.
[27]de Felice DV, Solfrizzo M, De Curtis F, et al. Strains of Aureobasidium pullulans can lower ochratoxin a contamination in wine grapes[J]. Phytopathology, 2008, 98:1261-1270.
[28]Upadhayaa SD, Songa JY, Park MA, et al. Isolation, screening and identification of swine gut microbiota with ochratoxin a biodegradation ability[J]. Asian-Australas Anim Sci, 2012, 1:114-121.
[29]Madhyastha MS, Marquardt RR, Frohlich AA. Hydrolysis of ochratoxin a by the microbial activity of digesta in the gastrointestinal tract of rats[J]. Arch Environ Contam Toxicol, 1992, 23(4):468-472.
[30]Mobashar M, Blank R, Hummel J, et al. Ruminal ochratoxin A degradation-contribution of the different microbial populations and influence of diet[J]. Animal Feed Science and Technology, 2012, 171(2-4):85-97.
[31]Camel V, Ouethrani M, Coudray C, et al. Semi-automated solidphase extraction method for studying the biodegradation of ochratoxin A by human intestinal microbiota[J]. J Chromatogr BAnalyt Fechnol Biomed Life Sci, 2012, 893-894:63-68.
(责任编辑 狄艳红)
Bio-detoxification of Ochratoxin A by Microorganism
Jia Xin Xu Shihan Liang Zhihong Huang Kunlun
(College of Food Science and Nutrition Engineering,China Agricultural University,Beijing 100083)
Ochratoxin A(OTA)is a class of polyketides, which are secondary metabolites produced by Aspergillus spp. and Penicillium spp., having a strong toxicity. In recent years, there are a large number of domestic and international researches on OTA biological detoxification, mainly on screening strains of OTA detoxification, including bacteria, molds and yeasts and so on . In addition, exploring different microbial detoxification mechanism is also a research hotspot. In this paper, these two aspects of progress were summarized and discussed.
Bio-detoxification Ochratoxin A Bacterial Fungi Intestinal microbial
10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2014.12.003
2014-04-13
国家高技术研究发展计划(“863”计划)(2012AA101609-7),教育部(2011JS119)
贾欣,女,硕士研究生,研究方向:微生物脱毒与食品安全;E-mail:jx610425@163.com
梁志宏,女,博士,副教授,研究方向:微生物与食品安全;E-mail:lzh01@cau.edu.cn