C型凝集素受体与Th17细胞免疫在真菌感染中的研究进展
2014-01-24吴婷,孙禾,施毅
吴 婷, 孙 禾, 施 毅
C型凝集素受体与Th17细胞免疫在真菌感染中的研究进展
吴 婷, 孙 禾, 施 毅
C型凝集素受体; Th17细胞应答; 真菌感染; 细胞因子; 固有免疫
Th1、Th2细胞是经典的辅助T细胞,分别以分泌INF-γ、IL-4为特征。Th17细胞是近期发现的辅助T细胞,以分泌IL-17为特征,能诱导多种炎性反应及髓系细胞、上皮细胞等抗微生物应答。Th17细胞分化是当前关注的焦点。已有研究结果证实,Th17细胞应答能驱动保护性的抗真菌免疫反应[1],但其介导的炎性效应与自身免疫疾病相关。
抗原提呈细胞(antigen-presenting cell,APC)上的模式识别受体(pattern recognition receptors,PRRs)是研究Th17细胞免疫的重要领域。C型凝集素受体家族(C-type lectin receptors,CLRs)介导的Syk/CARD9信号通路是典型的PRRs相关信号通路,在Th17细胞免疫应答中起重要作用。现就CLRs与Th17细胞分化、抗真菌免疫应答及所致自身免疫疾病作一综述。
一、CLRs与Th17细胞免疫
CLRs是具有典型C型凝集素样结构域(C-type lectin domain,CTLDs)的蛋白质,识别外生病原相关分子模式(pathogen associated molecular patterns,PAMPs)及内生配体,刺激天然免疫应答形成。
(一)Dectin-1(Clec7a) Dectin-1主要表达在单核/巨噬细胞、树突状细胞、中性粒细胞上,在炎性细胞、生物黏膜屏障细胞(如胃肠道、呼吸道黏膜细胞)表达较多,可特异性识别微生物表面的β-(1,3)-葡聚糖,识别念珠菌属、曲霉属、肺孢菌属和球孢菌属[2]。
Dectin-1介导产生的细胞因子影响T细胞分化。APCs上Dectin-1被激活后分泌IL-23,驱动选择性Treg细胞向产IL-17 T细胞转换[2]。β-(1,3)-葡聚糖刺激APCs能介导CD4+T细胞中Th17和Th1的分化、诱导抗体产生并驱动CD8+T细胞免疫[2]。激活与早期天然免疫有关的γδT细胞的Dectin-1,介导生成Th17细胞关键的因子IL-17、IL-23增加[2]。在真菌感染中,Dectin-1直接介导适应性免疫,驱动IL-17应答。烟曲霉支气管内感染Dectin-1-/-小鼠,与野生型小鼠相比,肺部真菌负荷增多、IL-17减少、IL-23增多,起主导优势的是产IL-12p40、INF-γ的Th1细胞免疫[3]。然而有效的抗真菌免疫应是Th1/Th17的应答平衡,而不是Th1或Th17的独立作用;抗体中和IL-17后产生相同效果,证实IL-17在宿主抵抗烟曲霉感染中起保护性作用[4]。在白念珠菌感染中,由于Dectin-2对Th17细胞影响远大于Dectin-1,故Dectin-1的作用不及其在烟曲霉感染中的作用大[4]。前体阻断密码子Tyr238X影响人类Dectin-1的多态性,削弱对β-(1,3)-葡聚糖的识别,致IL-17、IL-10、IL-1β、IFN-γ、TNF-α和IL-6生成缺陷,故多态性纯合子个体易患黏膜、皮肤真菌感染,口腔、胃肠道念珠菌定植,侵袭性真菌病易感性增强[5]。但也有研究表明,该类人群对白念珠菌定植相关的移植性宿主疾病易感性降低。Dectin-1的第2个单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphisms,SNP)位点为在非洲HIV感染者中发现的1223S[3],致INFγ生成减少。
(二)Dectin-2(Clec-4n) Dectin-2在巨噬细胞、树突状细胞、炎性单核细胞上表达,识别甘露聚糖、α-甘露糖结构,进而识别新型隐球菌、白念珠菌、结核分枝杆菌等病原体[2]。激活Dectin-2生成IL-1β、IL-23p19,诱导CD4+T细胞应答趋向Th17细胞分化。
近期关于Dectin-2在白念珠菌感染中的研究为其提供介导Th17细胞免疫的证据。小鼠系统性白念珠菌感染,Dectin-2通过Syk/CARD9信号通路在Th17和Th1细胞免疫中起重要作用,其中Th1细胞免疫需Dectin-1参与[2]。白念珠菌系统性感染Dectin-2-/-小鼠,与野生型相比,生存率下降,真菌负荷增加[2]。Dectin-2-/-骨髓来源树突状细胞(bone marrow-derived dendritic cells,BMDC)应对白念珠菌酵母相感染时,IL-1β、IL-6、IL-10、IL-12p70、IL-23和TNF-α表达减少[4],应对白念珠菌菌丝相感染时,上述细胞因子仅部分减少,说明除Dectin-2外,尚有其他PRRs能识别菌丝相这一病原体形式。在应对白念珠菌菌丝相感染时,Dectin-2-/-骨髓来源巨噬细胞(bone marrow derived macrophages,BMDM)IL-10、TNF-α和IL-12p40产生减少[6]。小鼠播散性念珠菌感染后,Dectin-2单克隆抗体抑制IL-2、IL-10和TNF-α的产生,并抑制Th17细胞活化[4]。在白念珠菌感染人树突状细胞(DCs)体外实验中,给予抗Dectin-2抗体后IL-1β和IL-23p19分泌减少,IL-6和IL-12p35分泌增加。目前尚未发现影响人类Dectin-2的结构和功能的SNP位点。
(三)巨噬细胞甘露糖受体(mannose receptor,MR,CD206) MR绝大多数位于细胞内部,血清中亦存在可溶性受体,可在巨噬细胞、DC细胞、肝细胞和淋巴内皮细胞中表达[2]。能与甘露糖、海藻糖、壳多糖结合,识别细菌、病毒和真菌病原体,介导广泛的细胞内应答,促进TNF、GM-CSF、IL-12、IL-8、IL-6和IL-1β产生,但亦有研究表明,MR抑制TNF等特定细胞因子产生。MR在抗微生物免疫中的作用尚不明确,应对白念珠菌、肺孢菌感染时,MR缺陷小鼠免疫功能无明显改变[7],由于CD4+T细胞免疫缺乏,对新型隐球菌感染易感性增强。
人外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMCs)体外实验表明,给予白念珠菌或纯化的白念珠菌甘露聚糖刺激,MR介导IL-17产生,该过程需要APCs参与并被TLR2/Dectin-1放大。肺孢菌感染时,TLR2及MR协同作用增加IL-8产生。上述结果说明PRRs通过相互间的协同作用调控免疫应答。研究表明,分枝杆菌刺激MR能抑制Th17应答[8]。并非MR所有配体都能产生作用,阿拉伯甘露糖(Man-LAM)作为分枝杆菌细胞壁分子,能增加IL-10、减少IL-12的产生,但甘露糖无此作用[2]。不同真菌细胞壁结构和组分的差异导致MR敲除鼠的存活率差别。
(四)Mincle(Clec4e) Mincle即巨噬细胞介导的C型凝集素受体,主要表达在激活的巨噬细胞,DCs可能也有表达。其配体为α-甘露聚糖、非典型分枝杆菌索状因子(海藻糖二霉菌酸酯TDM,海藻糖二山嵛酸酯TDB),识别坏死细胞、分枝杆菌、念珠菌属、酵母菌属等真菌[2]。Mincle-/-小鼠对念珠菌敏感性增加,体内给予抗体封闭Mincle能减少坏死细胞所致的中性粒细胞招募及炎性因子产生。目前仅在分枝杆菌中发现Mincle直接趋化Th17细胞免疫。具有炎性蛋白功能的TDM作为非典型分枝杆菌亚单位疫苗的佐剂,驱动保护性Th1和Th17细胞免疫[9]。给予Mincle(或FcRγ链)-/-小鼠TDB或抗原刺激不能诱导Th1和Th17细胞免疫。体外实验Mincle-/-巨噬细胞应对TDB时,不产生IL-6和G-CSF[10];以TDB作为佐剂致敏Mincle-/-小鼠,可观察到淋巴结细胞结构减少,再激发淋巴细胞时INF-γ和IL-17产生减少。
(五)DC-SIGN DC-SIGN全称为“树突状细胞特异性的细胞间黏附分子可结合的非整合素(DC-specific ICAMgrabbing nonintergrin)”。人DCSIGN(CD-209)主要表达于未成熟的DCs细胞、巨噬细胞,识别甘露聚糖、岩藻糖,进而识别分枝杆菌、念珠菌属、烟曲霉孢子和新型隐球菌[2]。DC-SIGN调节TLRs等其他PRRs诱导的细胞因子的产生,但不能直接诱导细胞因子生成[2]。作为免疫调节受体,其通过IL-10的生成调控过度的炎性反应及宿主组织损伤,硬蜱和HIV利用该通路逃避免疫系统[3]。以结核分枝杆菌或β-(1,3)-葡聚糖刺激人类DCs,DC-SIGN激活后下调IL-1β、IL-6、IL-23和TNF-α,抑制Th17细胞免疫[8]。上述研究证实,DC-SIGN可以介导Th17细胞应答。
人DC-SIGN启动子突变(-139A/G)导致侵袭性曲霉感染[3]。DC-SIGN识别含甘露糖的微生物,为信号小体招募下游的效应因子,导致NF-κB的p65亚基磷酸化和乙酰化,促进其活性,增加IL-10、IL-6、IL-12p35和IL-12p40(IL-23亚基)转录[11]。对含岩藻糖的微生物应答时,其激活并释放KSR-1、CNK、Raf-13种信号小体组分,仅增加IL-10表达[11]。
(六)CD161 CD161在NK细胞、NKT细胞和T细胞上表达,单核细胞、DCs细胞上也有表达。其识别糖类、凝集素样转录产物1(LLT1、CLEC2D)、增殖介导淋巴细胞相关受体等配体,调节NK细胞溶解、跨内皮迁移、不成熟胸腺组织T细胞和NKT细胞增殖。在多种CD161+的骨髓和淋巴细胞中,该受体介导TNF、IL-1β、IFNγ、IL-4和IL-12的产生[2]。
CD161是人产IL-17 T细胞的标志。该细胞亚群最初定义是具有不同功能的人CD4+和CD8+T细胞,随后在脐带干细胞、新生儿胸腺前体细胞中发现产IL-17 T细胞的CD161显著上调。病毒感染所致的肠道和慢性炎性反应的研究表明,该受体的确在人所有产IL-17 T细胞上表达[12]。除作为细胞标志外,CD161对于Th17细胞的功能尚不清楚。由于Th17细胞通过表达细胞因子受体(如CCR6)而靶向作用于特定组织,故考虑CD161在细胞的跨内皮迁移中起作用[12]。抗体刺激Th17细胞时,该受体不影响细胞因子产生。
(七)CLEC-1(CLEC-1A) CLEC-1是缺少显著特征的Dectin-1族的CLRs,在内皮细胞、DC细胞和髓系细胞上表达[2]。LPS或INFγ刺激下调CLEC-1,上调免疫抑制细胞因子IL-10和TGF-β。CLEC-1在调节Th17细胞分化中起到重要作用。啮齿类动物模型中,耐受的异体移植者CLEC-1下调,与移植位点IL-17低水平和CD4+CD25+Treg细胞表达有关。混合淋巴细胞反应中,内皮细胞与CD4+CD25+Treg细胞相互作用致CLEC-1表达增加[13],给予siRNA干扰DC细胞CLEC-1表达后Th17细胞分化增加,Foxp3表达减少。
二、Th17细胞在抗真菌感染中的作用
(一)Th17细胞与临床研究 CD4+T细胞参与的适应性免疫在抗真菌感染中发挥保护性作用,故HIV患者对念珠菌属、隐球菌属易感性增强[11],来自于人、鼠的研究表明该保护作用需要Th17细胞应答参与[14]。但Th17细胞参与的抗真菌免疫也会对机体产生不利作用,如Th17细胞免疫突变的遗传研究发现STAT3突变(高IgE综合征),AIRE突变(自身免疫性多内分泌病-念珠菌病-外胚层营养不良autoimmune polyendrocrinopathy with candidiasis and ectodermal dystrophy,APECED),Dectin-1突变和CARD9突变与抗真菌免疫缺陷有关[15]。亦有患者有其他受体突变,如缺乏IL-12p40和IL-12Rβ1,致Th17细胞减少、真菌易感性增加[15]。绝大多数患者罹患慢性皮肤黏膜念珠菌病(chronic mucocutaneous candidiasis,CMC),表现为持续或反复发作的念珠菌黏膜、皮肤、指甲感染。
1.高IgE综合征(hyper IgE syndrome,HIES):常染色体显性遗传病HIES又名Job’s综合征,是一组复杂的以血清高Ig E、遗传性过敏性皮炎为特征的免疫缺陷疾病,亦有骨骼和牙齿畸形等非免疫系统紊乱。80%患者受CMC困扰,亦感染其他真菌如曲霉、隐球菌、肺孢菌。HIES患者由于多处显性负性突变致STAT3功能缺失[2],T细胞不能产生IL-17,亦不能驱动Th17细胞分化[15]。IL-6和IL-1β启动Th17分化,Th17分化发育过程依赖STAT3信号转导。STAT3的激活能启动相应基因转录,分泌细胞因子IL-17A、IL-17F、IL-21、IL-22,上皮细胞表达IL-17和IL-22受体,细胞因子与受体结合,释放趋化因子和粒细胞集落刺激因子,招募中性粒细胞聚集到炎性反应部位,在抗微生物免疫中发挥重要作用。STAT3的激活需要Th17细胞分化的关键的细胞因子IL-6、IL-21、IL-23的刺激,同时需要视黄酸相关孤儿受体γt(retionic acidrelated orphan receptor,RORγt)、Treg细胞内FoxP3下调、IL-23R和IL-17自身表达的参与[2]。
2.APECED:该病亦称自身免疫性多腺体综合征I(autoimmune polyendocrine type I syndrome,APS-1),是罕见的自身免疫介导的多种腺体损伤的常染色体隐性遗传疾病,突出表现在甲状旁腺、肾上腺功能减退,亦有外胚层营养不良等其他异常。CMC是该病最重要的标志。95%患者自身免疫调节因子(autoimmune-regulator,AIRE)基因突变而无功能。AIRE通过调控胸腺和外周淋巴器官产生自身抗体从而影响中枢耐受,失去该调节因子则自身免疫疾病的发生率增高[2]。由于该病患者产生中和Th17细胞因子IL-17A、IL-17F和IL-22的自身抗体,致细胞因子缺失,CMC易感性增强,即便在某种罕见发生CMC感染的胸腺瘤患者体内也有类似抗体存在[16]。
3.CARD9缺失:胱天蛋白酶募集域蛋白9(CARD9)是髓系细胞中主要的信号传递者,与B细胞淋巴瘤10(BCL10)和黏膜相关淋巴组织(MALT1)共同传递信号,激活丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)和核因子(NF-κB)。CARD9调节信号通路下游的Syk激酶,触发Dectin-1、Dectin-2、Mincle等与ITAM结合,产生细胞因子、趋化因子,介导Th17细胞应答[2]。小鼠CARD9在抗真菌和抗细菌免疫中起重要作用。人类CARD9突变致未成熟的终止密码子Q295X增加[17],易患CMC及其他皮肤癣菌、侵袭性念珠菌感染,与健康对照组相比,患者Th17细胞产生比例低。真菌感染的体外研究表明,CARD9突变细胞损伤严重[17]。
(二)Th17细胞在实验动物中研究进展 人类相关研究表明,Th17细胞应答具有保护作用。由于来自基因敲除小鼠模型的数据不统一,故Th17细胞在鼠类抗真菌(主要是念珠菌属)中的免疫作用尚有争议。一方面,从IL-17诱导抗微生物效应因子产生及对中性粒细胞招募作用中可以看出Th17细胞在系统性感染、口腔黏膜感染模型中呈保护作用[18];在新型隐球菌和肺孢菌感染中,也存在保护性的Th17细胞应答[19]。另一方面,鉴于不适当的IL-17介导的中性粒细胞激活及随后造成组织损伤,故认为Th17细胞免疫在系统性感染中不起作用,在胃肠道黏膜感染和系统感染中对宿主无直接伤害[20]。IL22也存在相类似的争议。上述原因与动物模型选择(如Th17应答在口腔病毒肠道感染模型中显示出的保护作用有组织特异性)、小鼠品系(Balb/c或C57BL/6)、敲除实验(IL-17A,IL-17R等)、选择的真菌品系(不同的真菌能被不同的PRRs识别,有时会抑制Th17细胞应答)有关[21]。
综上所述,在抗真菌免疫应答中,CLRs介导并调节细胞因子产生、触发Th17细胞保护性的抗真菌免疫应答。目前在抗真菌免疫中CLRs与Th17细胞应答仍有许多未知与矛盾。深入研究真菌感染中CLRs功能、与其他PRRs在Th17细胞免疫中的相互作用有助于新型疫苗研发,为探究感染保护性免疫应答提供新思路。
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夙龄爱远壑,晚莅见奇山。标峰彩虹外,置岭白云间。倾壁忽斜竖,绝顶复孤圆。归海流漫漫,出浦水溅溅。野棠开未落,山樱发欲然。忘归属兰杜,怀禄寄芳荃。眷言采三秀,徘徊望九仙。(《早发定山》)
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Research update of C-type lectin receptors and Th17 responses in fungal infection
WU Ting,SUN He,SHI Yi.
(Department of Respiratory Medicine,Nanjing General Hospital of Nanjing Military Command,Nanjing University Clinical School of Medicine,Nanjing210002,China)
2013-04-01
国家自然科学基金资助项目(81270064)。
南京大学医学院临床学院(南京军区南京总医院)呼吸与危重症医学科,南京 210002。
吴婷(1987—),女,博士研究生,主要从事肺部感染研究。
施毅,E-mail:shiyi56@126.com。
R519
A
1009-7708(2014)03-0257-05