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Cavins:胞膜窖相关蛋白新视野

2013-08-15史丹刘艳廉馨邹伟

生物工程学报 2013年11期
关键词:内皮细胞调节乳腺癌

史丹,刘艳,廉馨,邹伟,2

1 辽宁师范大学生命科学学院,辽宁大连 116081

2 辽宁省生物技术与分子药物研发重点实验室,辽宁大连 116081

自1953年发现caveolae 以来,其特殊结构和功能引起了人们极大的兴趣。Caveolae 是细胞质膜内陷形成的直径为50~100 nm Ω形状的结构,作为质膜上一种特殊形式的脂筏,其通过集中或分离受体和信号转导中间传递分子来调节细胞信号转导,并为一些激酶和磷酸酶调节其下游的信号分子提供微环境。Caveolae 失去功能会导致血脂异常、肌肉萎缩、癌症、糖尿病以及心血管疾病等[1]。1992年,Glenney 等首次发现并克隆出caveolae 的第一个标志性蛋白Caveolin/VIP21(Caveolin-1/Cav-1)。哺乳动物Caveolins 蛋白家族 Caveolin-1/(Cav-1)、Caveolin-2/(Cav-2)和 Caveolin-3/(Cav-3)是分子量为18~24 kDa 的膜蛋白,其含有类似的N 末端和 C 末端结构,并通过脚手架(Caveolin scaffolding domain,CSD)结构域实现蛋白与蛋白之间的相互作用。在大多数的细胞以及心血管系统所有的细胞中均有Cav-1和Cav-2的表达,而Cav-3主要存在于心肌和骨骼肌细胞中[2-4],并在肌肉特异性激酶信号通路中发挥重要作用[5]。

Cavin-1又称为PTRF (Polymerase transcript release factor,PTRF),最初被定义为聚合酶Ⅰ转录释放因子。RNA 聚合酶Ⅰ终止转录涉及终止转录复合物的延伸及转录复合物从模板上释放下来两个过程。而已终止的复合物的解离需要一种细胞因子的参与,即PTRF[6-7]。PTRF 作为转录释放因子的功能已被大家所熟知。

然而,Hill 等和Liu 等[8-9]在2008年研究发现,caveolae 的形成同时需要另一类蛋白Cavins蛋白,特别是之前报道的PTRF 的参与,其功能主要是作为支架蛋白同时能够调节caveolae 的结构和功能。随着Caveolins 和Cavins 研究的逐渐深入,caveolae 的功能及其机制得到更深入的了解。文中将就近年来国内外caveolae 相关蛋白Caveolins 和Cavins 的研究进展以及两者之间相互作用关系进行综述。

1 Cavins 与caveolae

2001年,Vinten 等[10]利用免疫金标记技术发现,在大鼠脂肪细胞的caveolae 中存在一种含量丰富的、分子量为60 kDa 的蛋白,这种蛋白并不受胰岛素刺激的影响。直至2008年,Hill 等和Liu等[8-9]将其定义为caveolae 相关蛋白——Cavins 蛋白。Cavins 蛋白家族包括Cavin-1(Polymerase transcript release factor,PTRF)、Cavin-2(Serum deprivation protein response,SDPR)、Cavin-3(Serum deprivation response-related gene product that binds to c-kinase,SRBC)和Cavin-4(Musclerestricted coiled-coil protein,MURC)。所有的Cavins 都能与磷脂酰乙醇胺结合,并且通过亮氨酸拉链状的结构实现蛋白与蛋白之间的相互作用[11]。

在哺乳动物中,基因敲除cavin-1会降低caveolae 的密度。cavin-1基因敲除的细胞中Caveolins 蛋白仍然留在质膜上,但是显示出其侧向移动增加并加速溶酶体降解。Caveolae 的形成需要Cavin-1的参与,使移动的Caveolins蛋白进入固定的caveolae 中。基因沉默cavin-1会破坏caveolae 的结构[8-9]。Liu 等[9]利用小RNA干扰的方法研究发现,在HEK293-Cav-1细胞中过表达Cavin-1以及在脂肪细胞中敲除cavin-1能够分别提高和降低Cav-1的表达水平;在体外培养的细胞中过表达Cavin-1能引起Cav-1的表达水平升高;基因敲除cavin-1降低Cav-1的表达水平[12]。

Cavins 蛋白家族的其他成员在调节caveolae 的形成、大小以及动力学特征中同样发挥重要作用[13-15]。Cavin-1和Cav-1的稳定表达需要Cavin-2的参与,Cavin-1与Cav-1的相互作用可能是通过Cavin-2实现的。Hansen 等[13]利用免疫共沉淀的方法发现,在体内Cavin-1直接与Cavin-2相互作用并与Cav-1一起形成复合物,从而稳定caveolae 的结构。过表达Cavin-2将诱导caveolae 发生形变,促使细胞膜卷曲。Cavin-3在心肌细胞中高表达,在肝脏及脑等其他caveolae 蛋白表达水平较低的细胞中也均有表达。Cavin-4主要在肌细胞中表达较多,在人类肌肉疾病中Cav-3功能紊乱,同时Cavin-4的分布也受到干扰,使Cavin-4作为caveolae 蛋白成为新的肌肉疾病的指示者[15]。

2 Caveolins 与caveolae

内皮细胞一氧化氮合成酶(eNOS)是存在于质膜caveolae 上的一个非受体蛋白,能够直接与CSD 相互作用[11]。相关研究显示,Cav-1对 eNOS 的活性具有负调控作用:Cav-1和caveolae 的缺失会导致eNOS 的活性增强,NO释放量增加;Cav-1与eNOS 相互作用抑制eNOS的活性,减少NO 的产生[11,16]。事实上一些研究报道用在体Cav-1基因敲除或siRNA 干扰的方法证实,缺失或减少Cav-1能够增加白蛋白或其他大分子的运输;而用eNOS 的抑制剂处理Cav-1基因敲除的小鼠能够降低由于Cav-1缺失对大分子运输增加的效应,说明Cav-1可能是通过调节eNOS 的活性来控制大分子的运输[16]。Cav-1的表达与血管内皮细胞生长因子(VEGF)的表达呈正相关[17]。已经发现血管内皮细胞生长因子受体-2(VEGFR-2)存在于caveolae 中,Cav-1能够减少VEGF 刺激导致的血管再生,表明Cav-1参与血管再生的调节[18]。骨骼肌细胞中Cav-1的表达同样也是肌肉再生的标志[19]。

Cav-1参与多种疾病相关信号通路的调节。环氧化酶(Cox-2)是炎症反应信号通路的中间传递分子,最近的研究结果显示,内质网中的Cav-1与Cox-2结合并加速其降解[20];Caveolae通过其介导的水闸蛋白-5和咬合蛋白的内化作用参与脑内皮细胞障碍性功能紊乱,导致其通透性增加[21];Cav-1的缺失通过调节血管紧张素TGF-β信号通路促进肺的纤维化[22];在鼠或人体内Cav-1缺失同样会导致脂质失调,包括一些脂肪代谢障碍等疾病[23]。

与正常细胞相比,大多数癌细胞中Cav-1表达下调或缺失,且与肿瘤细胞的转移潜能呈负相关,这表明 Cav-1可能是肿瘤的抑制因子[24-25]。Cav-1的缺失在正常的成纤维细胞向与癌症相关的成纤维细胞转化的过程中也发挥重要作用[26]。本实验室前期研究结果表明,在人乳腺上皮细胞MCF10A 中基因沉默Cav-1会增加细胞周期相关蛋白Cyclin D1的表达,加速细胞周期从G1期向S 期转化,表明Cav-1表达下调可以改变哺乳动物的细胞周期进程[27]。Cav-1与乳腺的发育、乳腺细胞的转化和乳腺癌的发生也密切相关,Cav-1可通过与雌激素受体相互作用抑制与增殖相关的信号通路从而控制乳腺细胞的转化[28-30]。此外,Cav-1也参与肿瘤细胞自噬的调节[31]。需要指出的是Cav-1也可能扮演肿瘤促进因子的角色。在膀胱癌[32]以及前列腺癌[33]等癌症中,Cav-1促进细胞增殖和侵润。

3 Cavins 和Caveolins 的相互作用

3.1 Cavins 和 Caveolins 共同参与维持caveolae 的结构

Cavins 是另外一类含量丰富的caveolae 蛋白家族,协助Cav-1、Cav-2形成caveolae 并维持其结构的稳定性[34]。Cavin-1与Cavin-2同时参与调整 caveolae 的形成。Cavin-1会抑制caveolae 膜管的形成,而 Cavin-2会扩大caveolae,通过促进和抑制膜的形变,两者共同调整caveolae 的形成[35]。此外,Breen 等[36]研究发现,在3T3-L1脂肪细胞中,当胆固醇耗尽时,Cavin-2发生快速降解,Cavin-1从质膜向胞浆移动,并导致caveolae 结构的消失。恢复质膜中Cavin-2的表达同时需要Cavin-1参与重新形成caveolae 结构,表明Cavin-2与Cavin-1共同参与维持 caveolae 结构的稳定性。缺乏Cavin-1并不影响与其相结合的Cav-1和Cav-3的丰富度,然而在肥厚性幽门狭窄病人的成纤维细胞中,Cav-1不能定位于细胞表面,用电子显微镜研究发现caveolae 减少,剩余不到原来的3%;利用原子力显微镜结合荧光显像技术证实 caveolae 的确缺失,转染全长 cavin-1后caveolae 得到恢复[37]。另外,Liu 等[9]研究发现破坏细胞骨架会减少Cavins 的表达,但并不影响Cav-1的数量,因此推测Cavins 可能是通过细胞骨架来稳定caveolae 结构。

3.2 Cavins 与Caveolins 相互作用调节细胞功能

新近研究表明,Cavins 同样参与细胞多种功能的调节。Cavins 蛋白家族在不同的组织中表达水平不同,提示不同形式的Cavins 复合物的存在决定了不同组织和细胞之间caveolae 功能的差异性[38]。但这一假设目前仍缺少直接的证据。

3.2.1 Cavins 与Caveolins 相互作用调节细胞增殖与衰老

Hill 等[39]在多种细胞中通过选择性地操纵Cavin-1和Cav-1的表达,发现其共同参与调节细胞的增殖和转移,且这种调节功能依赖于caveolae结构。cavin-1基因沉默将提高内皮细胞中基本NO 的释放量,阻止体内内皮细胞的增殖、迁移以及胚胎细胞的形态发生。其可能的原因是cavin-1基因沉默解除了Cav-1对eNOS 的抑制作用;同样,在体外Cavin-1表达降低导致内皮细胞增殖、迁移、管状形成等血管生成表型的降低,而Cav-1的缺失同样能够刺激或者抑制血管生成[34]。因此,这一发现可能反映了Cavin-1对Cav-1的作用。另有研究显示Cavin-1参与调节细胞衰老。2011年,Bai 等[40]研究发现在衰老的人成纤维细胞中Cavin-1表达增加,过表达Cavin-1能够诱导细胞衰老。几乎在同时,Daniela 等[41]研究发现用shRNA 的方法下调Cavin-1的表达能够抑制氧化应激诱导的早期衰老;另外,在受到氧化应激后,Mdm2与P53发生解离,Mdm2定位到细胞膜上激活P53/P21信号通路这一过程中,同样需要Cavin-1的参与。

3.2.2 Cavins 与Caveolins 相互作用调节脂肪代谢

Cav-1基因突变将导致Ⅲ型先天脂肪代谢障碍。Kim 等[42]研究发现Cav-1缺失的病人显示出身材矮小、低钙血症以及维生素D 抵抗等特征。最近研究发现存在另外一种Ⅳ型先天脂肪代谢障碍,是由于位于染色体17q21位点的PTRF 的突变导致的[43]。cavin-1基因敲除的小鼠具有存活力和正常的体重,但是甘油三酯的量高于正常水平,脂肪组织块显著减少,葡萄糖耐受性不良以及高胰岛素血症,呈现出脂质营养不良性糖尿病的表型[44]。

3.2.3 Cavins、Caveolins 与癌症

Cav-1促进胰腺癌细胞的侵袭作用依赖于Cavin-1,基因沉默cavin-1会抑制胰腺癌细胞的侵袭、转移[45]。Yi 等[46]利用脂筏特异性染色等方法研究发现,敲低cavin-1会导致多药耐药的人乳腺癌MCF7细胞质膜上脂筏结构减少,且耐药性降低,表明癌细胞的多药耐药性可能是通过脂筏中的Cavin-1实现的。最近发现Angelo等[47]研究发现在正常的肺上皮细胞和非小细胞性肺癌细胞中,Cavin-1的表达存在很大差异。因此,Cavin-1有可能成为非小细胞性肺癌细胞潜在的生物标志和治疗靶点。在人类多种癌细胞中Cav-1发生突变或缺失,最近的研究显示,部分乳腺癌及其他类型的癌细胞中同样存在Cavin-3活性丧失的现象[48]。Bai 等[49]研究发现在乳腺癌细胞系以及乳腺肿瘤中Cavins 蛋白家族Cavin-1、Cavin-2、Cavin-3均表达下调,因此Cavins 蛋白家族将有可能成为乳腺癌发展进程的指示者。

4 展望

Caveolae 中含有大量的调节细胞的信号分子,Caveolins 作为其标志蛋白,参与细胞多种生命过程的调节。近年来越来越多的研究开始关注caveolae、Caveolins、Cavins 在生理以及病理状态下对细胞的调节功能,Cavins 的这一发现使我们对caveolae 的功能有了进一步的认识。Caveolins 不仅参与调节caveolae 的相关功能,有相关文献显示其在独立于caveolae 功能外也发挥重要作用。同样的,Cavins 除与Caveolins 相互作用外也有其独立的功能[11]。这需要更精细的方法和更深入的研究来揭示其新功能,从而为某些疾病的研究及其临床治疗提供新策略。

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