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鱼组织线粒体基因组提取方法的改进

2013-08-06赵春霞盛勃唐德江李鹏赵和生杨焕民刘胜军

黑龙江八一农垦大学学报 2013年2期
关键词:清液匀浆电泳

赵春霞,盛勃,唐德江,李鹏,赵和生,杨焕民,刘胜军

(黑龙江八一农垦大学,大庆 163319)

线粒体是真核细胞中普遍存在的一种重要而独特的细胞器,线粒体DNA 已被广泛应用于生物的发病机理、遗传变异、生物进化等多方面的研究,并取得了许多有价值的结果。动物线粒体DNA 具有分子量小、结构简单、只有16 Kb 左右[1-3]、母性遗传和进化速度快,个体内有高度的均一性,无组织特异性[4],便于取材分析。同时,mtDNA 又具有广泛的种内和种间多态性,在亲缘关系相近的物种间其进化速度比核基因快。开展动物线粒体DNA 结构与功能的研究,对于深入了解生物体发育过程中基因表达与调控的分子机理,核质相互作用方式以及分析生物种间,种内的进化关系等都具有重要意义[5-7]。如何快速有效地提取mtDNA 无疑成了进行这些方面研究的前提。应用了碱变性法,对如何快速高效地提取mtDNA 进行了探讨。

1 材料和方法

1.1 材料

以新鲜鲤鱼的肝脏、脾脏和肾脏组织为材料,材料购自大庆市水产品市场。

1.2 方法

取5~16 g 鲤鱼肝脏组织于少量SE 液中剪碎(或研磨碎),加约30 mL SE,以手动匀浆器上下匀浆10 次。将匀浆物1 100 r·min-1离心10 min 取上清液,以1 200 r·min-1离心12 min,沉淀即为线粒体,加5 mLSE 液悬浮线粒体,然后转至1.5 mL Eppendorf 管,每管1 mL 。每管加入1 mg·mL-1DNase1 1.5 uL 及RNaseA 2 uL,混匀,室温下静置70 min 后,在每管中加入70 uL 0.50 moL·L-1EDTA(pH8.0),1 200 r·min-1离心5 min,取沉淀,加入750 uL STE 洗涤沉淀。离心去上清,沉淀每管中加入220 uL 蛋白酶K,温浴2.5 h。1 500 r·min-1离心10 min,弃上清液,每管加150 mL TEN 溶液,混匀冰浴10 min,1 500 r·min-1离心10 min 取上清液,加入半倍体积的Tris-酚,室温振荡15 min 后以1 500 r·min-1离心10 min,小心吸取上层水相,去除残留的蛋白,重复此步骤2~3 次,直至中间白色的蛋白层基本没有,加入与原上清液1/2 体积的氯仿—异戊醇(23∶1),充分混匀。1 200 r·min-1离心10 min 取水相,加等体积异丙醇或无水乙醇混匀1 200 r·min-1离心12 min 取沉淀,用70%冷乙醇洗涤,1 200 r·min-1离心5 min 真空或自然干燥。加适量体积TE 溶解。

2 结果与分析

将提取的线粒体DNA 在0.8%的琼脂糖凝胶上电泳,以检测其纯度和相对分子质晕。琼脂糖凝胶浓度为0.1 ug·mL-1缓冲体系为TE 电泳液,在室温以5 V·cm-1恒压电泳当溴酚蓝行至离前端1.5 cm 时停止电泳后用清水冲洗,用凝胶图像分析系统观察,电泳条带为清晰、整齐、均匀的一条带,背景清晰。其中样本1 的拖尾较小,条带最为清晰,见图1。

图1 分离所得线粒体DNA 的电泳图谱Fig.1 The gel electrophoresis map of mitochondrial DNA

3 讨论

用本法提取出的鱼组织线粒体基因组结构完整,减少了分析的误差。本方法是在前人工作的基础上作了大量的试验而总结出来的,主要注意的几个问题如下:

3.1 匀浆器的匀浆次数是关键之一,匀浆次数过少时线粒体游离的量少,影响提取量;而匀浆次数过多时核膜破裂,增加了核DNA 污染。为了弄清楚上下匀浆的次数,可先匀浆5~6 次,取样;再匀浆5~6 次,取样;依次增加匀浆次数再分别取样。采用疏松的手动匀浆器匀浆,上下10 次即可,以免破坏细胞核,避免核DNA 的干扰。

3.2 差速离心是提取线粒体的关键。在提取鱼线粒体时,去除细胞碎片及杂质的离心力为1 000~1 500 r·min-1离心时间10~15 min;沉淀线粒体的离心力为1 200~1 500 r·min-1。离心力在1 200~3 500 r·min-1时随离心速度增加,沉淀内线粒体比例不断上升。

3.3 使用的Tris 酚的pH 值应在8.0,DNA 在pH 为7.8~8.0 的条件下比较稳定,在中性或酸性条件下,RNA 比DNA 更容易游离到水相,可获得RNA 含量较少的DNA 样品。

3.4 溶液的配制上适当提高了裂解液的浓度及pH值,加强脂类的洗涤效果,增强线粒体膜的裂解,对获得纯度较高的mtDNA 具有很好的效果。同时适当降低Tris-HCl 的浓度。增强低渗效果,增强细胞膜的通透性。

3.5 在提取线粒体DNA 的离心温度上,保证在4 ℃进行防止DNA 由于离心的温度升高而发生变性或断裂,影响其完整性。提高了后续研究酶切结果的准确性及真实性。

[1]王文,施立明.一种改进的动物线粒体DNA 提取方法[J].动物学研究,1993,14(2):197-198.

[2]戴建华,殷文莉,杨代淑,等.鲇鱼线粒体DNA 的酶切图谱[J].水产学报,1994,18(4):312-319.

[3]吴乃虎,王钢峰,阎景智,等.草鱼和鲤鱼线粒体DNA 的分离纯化及其GOI 基因的分子克隆[J].动物学报,1991,37(4):375-381.

[4]张亚平,施立明.动物线粒体DNA 多态性的研究概况[J].动物学研究,1992,13(3):289-298.

[5]李殿香.线粒体DNA 研究概况[J].济宁师专学报,1999,20(6):48-49.

[6]廖顺尧,鲁成.动物线粒体基因组研究进展[J].生物化学与生物物理进展,2000,27(5):508- 512.

[7]邵爱华,郑峰,吴胜,等.暗纹东方鲀mtDNA 的分离纯化及其细胞色素b 基因分子克隆[J].水产科学,2005,24(5):5-7.

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