GABA与巴戟天多糖复合物对雏鸡生产性能及免疫功能的影响

唐 嘉，陈良燕，王 博，邵子锋，张锦辉，陈 忠

（海南师范大学 热带动植物生态学教育部重点实验室，海南 海口571158）

文昌鸡是海南岛优秀的地方肉鸡品种，因其体型圆小、胫细短、皮薄肉酥、肉质嫩滑、肉味香浓而受到人们的普遍欢迎，已被农业部认定为地方家禽品种，并列入国家级畜禽遗传资源保护名录［1］。

养殖业的集约化、规模化发展使传染病爆发的几率越来越大［2］。抗生素药物虽能达到预防和治疗目的，但由于药物残留及人为滥用，极易引发毒副作用，不仅破坏肠道微生态平衡，也给人类的健康带来潜在的威胁。另一方面，我国政府提出，在海南岛进行“非免疫无疫区”试验，因此研发加速畜禽生长发育、提高生产性能、增强抗病能力的绿色饲料添加剂，成为当前养殖生产中亟待解决的重要问题。

近年来，大量药理及临床研究表明，中药多糖以其天然性、多功能性、低副作用、低药残、无抗药性等独特优势，已成为一种良好的免疫调节剂，能够提高机体的生产性能［3］及免疫功能［4-5］。巴戟天是四大南药之一，其多糖的含量较高，有较高的药用价值［6］。研究显示，巴戟天多糖能使幼年小鼠的胸腺的重量增加，提高小鼠巨噬细胞吞噬率和小鼠脾脏免疫特异玫瑰花环细胞的形成，从而增强其免疫能力［7］。但由于中药品种的多样性，加之受地理环境、提取工艺、化学结构等方面的影响，其应用效果也不相同。而且目前多糖的研究多侧重于单味中药多糖以及复方中药多糖，关于多糖与其他新型免疫增强剂复合物的研究较少。

γ-氨 基 丁 酸 （gamma-aminobutyric acid，GABA）是一种在动物体内起神经镇定作用的非蛋白质氨基酸，主要通过神经元突触后膜上的GABAA、GABAB、GABAC三种受体介导，参与体内多种行为和生理反应的调节［8-9］。研究表明，GABA具有提高动物采食量［10］、刺激生长激素分泌［11］、抗热应激［12］等作用。GABA还可能通过解除生长抑素的抑制作用来促进分泌性免疫球蛋白A（sIg A）的分泌和胃泌素的分泌［13］。最新研究结果显示，GABA作为存在于大脑中最重要的抑制性神经递质，对自身免疫性炎症有良好的抑制作用［14］，且无任何毒性作用和积蓄效应［15］，是一种新型的免疫增强剂。

本试验通过检测不同日龄雏鸡生产性能及部分免疫功能的发育状况，探究GABA与巴戟天多糖的复合物（GMP）对雏鸡生产性能及部分免疫功能发育的影响，为GABA及巴戟天多糖在免疫增强剂方面的应用提供试验依据。

1 材料与方法

1.1 试验动物及GABA与巴戟天多糖的复合物

10只1日龄雄性文昌鸡（由海南永基畜牧股份有限公司提供），随机分对照组（CK）、GABA组和GMP组。称重和编号，组间体重、采食量等无显著差异。CK组每日灌喂生理盐水0.2 m L；GABA组每日灌喂50 mg／kg GABA 溶液0.2 m L［12］；GMP组每日灌喂50 mg／kgGMP溶液0.2 m L。全部雏鸡自由饮蒸馏水和采食，饲料、饮水供应充足，室内自然通风与光照，鸡舍定期清扫消毒。

GMP由GABA与巴戟天多糖按5：3的比例整合而成。巴戟天多糖的提取采用水提醇沉法［16］，巴戟天根茎与蒸馏水按1：10（W：V）整合，浸泡24h，沸水浴抽提30 min，1000g离心10 min，滤纸过滤，调p H至中性，加3倍体积的75%乙醇，静置过夜，收集沉淀，干燥保存。GABA为Sigma公司产品，中药巴戟天（Morinda officinalis How）为湛江逢春制药有限公司提供。

1.2 检测指标及方法

1.2.1 生产性能测定 分别测定1日龄雏鸡初始体重与19日龄雏鸡的体重，记录各组雏鸡每日饲料消耗量，试验结束后分别计算平均日采食量、平均日增重和料重比。

1.2.2 免疫器官脏器指数测定及组织结构观察分别在第7、10、13、16、19 d时，空腹称重，并剖取各组雏鸡，无菌完整摘取胸腺、法氏囊，剔除脂肪组织和结缔组织后准确称重，记录湿重，计算胸腺、法氏囊指数。免疫器官指数＝器官湿重（g）／体重（kg）；生理盐水冲洗组织，置于Bouin＇s液固定，70%酒精冲洗并保存，之后进行常规切片及染色，观察组织结构的变化。

1.2.3 免疫指标测定 在第7、10、13、16、19 d，颈静脉取抗凝血1 mL，常规细胞计数法计算白细胞总数；颈静脉取非抗凝血2 mL，置4℃冰箱中45°倾斜放置2 h后，3 000 r／min离心10 min，分离血清，免疫比浊法测定血清溶菌酶含量（试剂盒购自南京建成生物工程研究所）；颈静脉取抗凝血2 mL，2 500 r／min离心20 min，分离血清，常规Elisa法测定血清C3蛋白含量（试剂盒购自上海恒远生物科技公司）。

1.3 数据处理与分析

试验数据采用SPSS17.0软件的one-way ANOVA进行分析，用LSD进行各组间多重比较，结果用ˉx±SD表示。

2 结果与分析

2.1 GMP对雏鸡生产性能的影响

由表1可知，与CK组相比，GABA组与GMP组雏鸡平均日增重均升高；平均日采食量、料重比均降低，且料重比差异显著（P＜0.05）。与GABA相比，GMP组雏鸡平均日增重升高，料重比降低。

2.2 GMP对雏鸡中枢免疫器官指数及显微组织结构发育的影响

随着日龄增加，雏鸡胸腺脏器指数逐渐增大，胸腺体积增大，胸腺小叶增多增大，小叶皮质变薄，比例相对减少；髓质范围变大，皮髓质界限逐渐模糊，髓质内胸腺小体增多增大。胸腺内淋巴细胞的数量随日龄的增加而增多。由表2知，与CK组相比，GABA与GMP组的胸腺指数均增大，且GABA组在第19日龄时达到显著性差异（P＜0.05）。GMP组在第7、19日龄时达到显著性差异（P＜0.05）；与GABA组相比，GMP组的胸腺指数仍增大，且在第7日龄达到显著性差异（P＜0.05）。显微结构方面，由图1可知，与CK组相比，GABA组及GMP组胸腺体积明显增大，胸腺小叶数量增多增大，皮质增厚，皮质比例增大，髓质比例减少。其中GMP组的组织结构变化较GABA组明显（A、B、C）。

表1 GMP对文昌鸡雏鸡生产性能的影响（n＝10）Table 1 Effects of GMP on growth performance of Wenchang chicken（n＝10）

表2 GMP对文昌鸡雏鸡中枢免疫器官指数的影响（n＝10）Table 2 Effects of GMP on the index of central immune organ in Wenchang chicks（n＝10）

图1 GMP对文昌鸡雏鸡胸腺和法氏囊组织结构的影响A，B，C.胸腺组织结构图；D，E，F.法氏囊组织结构图；A，D.对照组；B，E.GABA组；C，F.GMP组；Bar＝50μmFig.1 Effects of GMP on the structure of thymus and bursa of Fabricius in Wenchang chicksA，B，C.the structure of thymus；D，E，F.the structure of bursa of Fabricius；A，D.Control group；B，E.GABA group；C，F；GMP group；Bar＝50μm

随着日龄增加，雏鸡法氏囊指数逐渐增大，法氏囊滤泡数量明显增多，面积明显增大，滤泡皮质增厚，髓质变薄，皮髓质分界明显，滤泡内淋巴细胞数量随着日龄的增加而增多且排列更加紧密。由表2可知，与CK组相比，GABA组与GMP组的法氏囊指数均增大，且GMP组分别在第7、13日龄时达到显著差异（P＜0.05）；与GABA组相比，GMP组的法氏囊指数仍增大，且在第13日龄达到显著性差异（P＜0.05）。显微结构方面，由图1可知，与CK组相比，GABA组及GMP组法氏囊皱裂增多，体积增大；皱裂内法氏囊滤泡数量增多，体积增大，排列紧密，滤泡皮质增厚，皮髓质分界明显。其中GMP组的组织结构变化较GABA组明显（D、E、F）。

2.3 GMP对雏鸡外周血白细胞总数、血清中溶菌酶含量与补体3蛋白含量的影响

由表3可知，随着日龄增加，雏鸡外周血白细胞总数上升。与CK组相比，GABA组与GMP组雏鸡外周血白细胞总数均上升，且GABA组在第7日龄达到显著性差异（P＜0.05），GMP组在第7、10、13日龄时达到显著性差异（P＜0.05），与GABA组相比，GMP组雏鸡外周血白细胞总数上升。

由表4知，随着日龄增加，雏鸡血清溶菌酶含量增加。与CK组相比，GABA组与GMP组的雏鸡血清溶菌酶含量均增加，且GABA组在第13日龄时达到显著差异（P＜0.05）；GMP组在第10、13日龄时达到显著差异（P＜0.05），与GABA组相比，GMP组雏鸡血清溶菌酶含量有一定程度的增加。

表3 GMP对文昌鸡雏鸡外周血白细胞总数的影响（n＝10）Table 3 Effects of GMP on the amount of leucocytes in chicken peripheral blood（n＝10） ×109／L

表4 GMP对文昌鸡雏鸡血清溶菌酶含量的影响（n＝10）Table 4 Effects of GMP on the content of lysozyme in chicken serum（n＝10） U／m L

GMP对文昌鸡雏鸡血清补体3蛋白含量影响见表5。由表5知，随着日龄增加，雏鸡血清补体C3蛋白含量增加。与CK组相比，GABA组与GMP组雏鸡血清补体C3蛋白含量均有一定程度的上升趋势。且GMP组的上升趋势较GABA组明显。

表5 GMP对文昌鸡雏鸡血清补体3蛋白含量的影响（n＝6）Table 5 Effects of GMP on the content of complement 3 protein in chicken serum （n＝6） μg／m L

3 讨 论

3.1 GMP对雏鸡生产性能的影响

研究显示，GABA能够显著降低热应激肉鸡的呼吸频率和直肠温度［17］，提高日增重，降低饲料消耗，改善料重比［12］，从而提高生产性能。本试验研究结果显示，GABA能够使雏鸡的平均日增重增加，平均日采食量降低，料重比下降，改善其生产性能，与前人的研究成果相符。另一方面，多糖具有抗菌、抗病毒、改善动物生产性能等一系列作用。在畜禽饲料中添加酵母多糖［18］、黄芪多糖［19］、脂多糖［20］等可以促进生长性能。本试验研究结果显示，GMP组雏鸡的生产性能高于GABA组，提示巴戟天多糖与GABA存在协同效应。这与朱正生等［21］研究黄芪多糖与GABA的复合物对肉鸡生产性能影响的研究结果一致。但报道同时指出，黄芪多糖组与空白组比较差异不显著，因此推测，GABA与黄芪多糖复方对雏鸡的增重效果可能主要由GABA引起。本试验结果虽然显示GMP组雏鸡的生产性能高于GABA组，但无显著性差异，考虑到多糖的提取方式、给药方式均会导致多糖的利用效果［22］，加之目前鲜有关于巴戟天多糖提高雏鸡生产性能的报导。因此关于此复方引起雏鸡生产性能提高的机理需进一步试验研究。

3.2 GMP对雏鸡免疫功能及组织结构的影响

胸腺和法氏囊是鸡的中枢免疫器官。是来自骨髓的多功能干细胞繁殖分化成T、B淋巴细胞的场所，淋巴细胞在此繁殖不需要抗原刺激，它们向外周免疫器官输送T、B淋巴细胞，并决定外周免疫器官的发育［23-24］。Rivas等［25］研究认为胸腺、法氏囊的重量可用于评价雏鸡的免疫状态。免疫器官指数是反应免疫器官生长发育状况的一个重要指标。一般认为免疫器官重量增加是由于其自身细胞生长发育和分裂增殖所致，为免疫增强的表现；免疫器官重量下降为免疫抑制的表现；免疫指数的提高表明该器官成熟快。

本试验结果显示，随着发育的进行，雏鸡胸腺与法氏囊的脏器指数增加；胸腺体积增大，胸腺小叶增多，小叶皮质变薄，髓质变厚，髓质内胸腺小体增多增大，胸腺内淋巴细胞数量增多；法氏囊滤泡数量增多，面积增大，滤泡皮质增厚，髓质变薄，滤泡内淋巴细胞数量增多且排列更加紧密。说明机体的免疫机能增强，且GABA组雏鸡中枢免疫器官的脏器指数与器官发育程度均高于CK组，说明GABA能够促进雏鸡中枢免疫器官的生长发育和迅速成熟，使雏鸡免疫机能加强，抵抗各种病原微生物感染和抗各种应激的能力提高。这与伍应松［26］的研究结果相符。另一方面，GMP组雏鸡的中枢免疫器官指数与器官发育程度较CK组同样增大，且作用高于GABA组。考虑到巴戟天多糖也可以提高小鼠免疫器官指数以及巨噬细胞的吞噬率［27］，推测巴戟天多糖可以促进雏鸡中枢免疫器官的发育且GABA与巴戟天多糖存在某种协同作用。由于免疫器官的发育及淋巴细胞的增殖分化过程中需要大量的氨基酸、蛋白质、糖类等提供能量，且GABA代谢能产生丰富的谷氨酸，糖类代谢过程能产生大量非必需氨基酸等非糖物质，推测GABA及GMP提高雏鸡免疫机能可能是通过增加大量的能源物质实现的，抑或是通过调节体内多种酶的活性来影响蛋白质、糖类、脂类、无机盐等营养物质的代谢［28-29］，从而促进免疫器官的发育及淋巴细胞的增殖。但需要大量试验进一步验证。

3.3 GMP对雏鸡免疫细胞发育的影响

白细胞总数的变化可以反映机体抵抗力。本试验结果显示，随着发育的进行，雏鸡外周血白细胞总数增加，说明机体的抵抗力增强。GABA组雏鸡外周血白细胞总数高于CK组，说明GABA能够增强机体的免疫功能。另一方面，研究表明，人参多糖［30］、黄芪多糖［31］等均有增加动物外周血白细胞总数的作用，本试验研究表明，GMP组雏鸡外周血白细胞总数高于GABA组与CK组，说明GMP对雏鸡免疫机能的增强作用优于GABA，提示巴戟天多糖能够增加雏鸡外周血白细胞总数，且GABA与巴戟天多糖之间存在协同增强作用。有研究报道，GABA与黄芪多糖的复合物能够增强肉雏鸡血清新城疫抗体效价，且效果优于黄芪多糖组与GABA组［21］。说明GABA与黄芪多糖存在着协同增强作用。但目前对GABA与多糖复合物的研究较少，加之GABA本身作用机理的复杂性，对于该协同增强作用的深入作用机制有待进一步研究。

3.4 GMP对雏鸡免疫因子发育的影响

溶菌酶是单核细胞、中性粒细胞和巨噬细胞的产物。溶菌酶作为一种存在于动物正常体液及组织中的非特异性免疫物质，具有抗菌、抗病毒、抗肿瘤等多种药理作用［32］。高水平的溶菌酶含量说明吞噬细胞处于较高的活化状态，从而增强机体的抗菌防御机能。补体是抗体分子的增强或辅助因子，在机体免疫功能的调节、防御及免疫病理过程中都发挥着重要作用［33］。C3存在于体液中，在补体激活过程中起关键性作用，通过C3含量的测定可以反应血清总补体水平，是衡量体液免疫的重要指标。

本试验结果显示，GABA组及GMP组雏鸡血清中的溶菌酶含量均高于CK组，说明GABA与GMP均能增强机体巨噬细胞的活性，提高雏鸡血清中溶菌酶的含量。同时，巨噬细胞活性的增加，又使其产生大量活性物质，如溶细胞蛋白酶、溶酶体水解酶等，进一步调节机体的免疫机能。研究发现，溶菌酶含量的升高是由于高温或者代谢旺盛条件下嗜中性粒细胞、单核细胞及巨噬细胞的破裂［34］，推断本试验中的GABA及GMP组血清中溶菌酶含量增加的机制可能是在食用GABA和GMP后代谢旺盛条件下嗜中性粒细胞、单核细胞及巨噬细胞的破裂所引起的。

研究发现，饲粮中添加50 mg／kg GABA能显著提高夏季高温期蛋鸡血清IgG、Ig A和C3的含量［35］；金线莲多糖能够提高小鼠血清C3蛋白含量，从而提高机体的免疫机能［36］。本研究表明，GABA及GMP均能够提高雏鸡血清中C3蛋白含量，且GMP组的作用优于GABA。但对于GABA与多糖在提高血清C3蛋白含量的机制，需进一步探索。研究证实，神经内分泌系统和免疫系统之间存在着复杂的相互调节关系［37］，在免疫细胞上可能存在某些激素和神经递质的受体，它们可以调节免疫功能。GABA作为一种神经递质，是否也是通过该途径来影响雏鸡的免疫功能还有待进一步验证。

综上所述，GABA与巴戟天多糖复合物能够显著提高雏鸡的生产性能和免疫机能，且两者之间存在着协同增强作用，但因GABA作为神经传递介质在动物内也是普遍存在，而外源性添加若剂量控制不好，会对其作用效果产生很大的影响，当剂量超过机体耐受力的时候，有可能会引起休克或者死亡，当剂量不足时效果却不明显。因此，如何在畜禽生产中使GABA能够稳定高效地发挥作用是未来研究的重点方向。另一方面，对于GABA与巴戟天多糖的具体的配比有待进一步验证。

［1］ 中华人民共和国中央人民政府.中华人民共和国农业部公告：国家级畜禽遗传资源名录［EB／OL］.［2013-05-10］.http：／／www.gov.cn／gzdt／2006-06-10／content-30243.htm.

［2］ Basuno E，Yusdja Y，Ilham N.Socio-economic impacts of A-vian influenza Outbreaks on Small-scale Producers in Indonesia［J］.Transboundary and Emerging Diseases，2010，57：7-10.

［3］ Avila E，Arce J，Soto C，et al.Evaluation of an enzyme complex containing nonstarch polysaccharide enzymes and phytase on the performance of broilers fed a sorghum and soybean meal diet［J］.The Journal of Applied Poultry Research，2012，21：279-286.

［4］ Kong X F，Zhang Y Z，Yin Y L，et al.Chinese yam polysaccharide enhances growth performance and cellular immune response in weanling rats［J］.Journal of the Science of Food and Agriculture，2009，89（12）：2 039-2 044.

［5］ Li WJ，Ni S P，Peng X P，et al.Ganoderma atrum polysaccharide improves age-related oxidative stress and immune impairment in mice［J］.Journal of Agricultural and Food Chemistry，2012，60（6）：1 413-1 418.

［6］ Zhu M Y，Wang C J，Wang X，et al.Extraction of polysaccharides from Morindaofficinalis by response surface methodology and effect of the polysaccharides on bone-related genes［J］.Carbohydrate Polymers，2011，85（1）：23-28.

［7］ 陈 忠，方代南，纪明慧.南药巴戟天水提液对小鼠免疫功能的影响［J］.科技通报，2003，19（3）：244-246.

［8］ 谢玉芝，谢 佳，陈 忠，等.产前热应激对仔鼠生殖腺GABA能神经元受体发育的影响［J］.中国兽医科学，2011，4（3）：298-302.

［9］ Kim J S，Kim W B，Kim Y B，et al.Chronic hyperosmotic stress converts GABAergic inhibition into excitation in vasopressin and oxytocin neurons in the rat［J］.The Journal of Neuroscience，2011，31 （37）：13 312-13 322.

［10］ Girard C L，Seoane J R，Matte J J.Studies of the role of gamma-aminobutyric acid in the hypothalamic control of feed intake in sheep［J］.Canadian Journal of Physiology and Pharmacology，1985，63（10）：1 297-1 301.

［11］ Echo J A，Lamonte N，Ackerman T F，et al.Alterations in food intake elicited by GABA and opioid agonists and antagonists administered into the ventral tegmental area region of rats［J］.Physiology and Behavior，2002，76（1）：107-116.

［12］ 陈 忠，王 婷，黄丽明，等.GABA对热应激仔鸡的影响［J］.动物学研究，2002，23（4）：341-344.

［13］ Van Hagen P M.Somatostatin receptor expression in clinical immunology［J］.Metabolism，1996，45：86-87.

［14］ Bhat R，Axtell R，Mitra A，et al.Inhibitory role for GABA in autoimmune inflammation［J］.PNAS，2010，107（6）：2 580-2 585.

［15］ 杨海峰，葛竹兴，郁 杰.γ-氨基丁酸的急性毒性和积蓄毒性的研究［J］.安徽农业科学，2008，36（13）：5 464-5 491.

［16］ 陈 忠.南药巴戟天多糖提取方法的比较研究［J］.科技通报，2004，20（6）：546-548.

［17］ 李 超，赵青余，马悦培，等.γ-氨基丁酸对持续高温热应激肉仔鸡生产性能和血液指标的影响［J］.中国畜牧兽医，2010，4：556-559.

［18］ 李萍萍，谭本杰，唐湘景，等.酵母多糖对种鸡生产性能和免疫功能的影响［J］.畜牧与饲料科学，2011，32（3）：88-90.

［19］ 李树鹏，赵献军.黄芪多糖、益生菌合生元对雏鸡生长和免疫的作用［J］.中国农学通报，2005，21（6）：51-54.

［20］ 胡骁飞，魏凤仙，呙于明.脂多糖（LPS）刺激对肉仔鸡生产性能及肌肉品质影响［J］.中国农业大学学报，2011，16（1）：60-65.

［21］ 朱正生，郁 杰，洪伟鸣，等.γ-氨基丁酸·黄芪多糖复方对肉雏鸡生长及免疫性能的影响［J］.安徽农业科学，2009，37（19）：8 994-8 995.

［22］ 王学斌，陈功义，魏战勇，等.黄芪多糖粉剂和注射剂对雏鸡免疫功能和生长的影响比较［J］.中国家禽，2007，29（3）：21-23.

［23］ Minowada J，Ohnuma T，Moore G E.Rosette-forming human lymphoid cell line.I.establishment and evidence for origin of thymus derived lymphocytes［J］.Journal of the National Cancer Institute，1972，49（3）：891-895.

［24］ Glick B，Chang T S，Jaap R G.The bursa of fabricius and antibody production［J］.Poultry Science，1956，35：224-225.

［25］ Rivas A，Fabricant J.Indication of Immundepression in chicken infected with Various strain of Marek＇s Disease Virus［J］.Avian Disease，1985，32：1-8.

［26］ 伍应松.γ-氨基丁酸对高温条件下大鼠生长、免疫及繁殖功能的影响研究［D］.湖南长沙：湖南农业大学，2009.

［27］ 何传波，李 琳，汤风霞，等.不同巴戟天多糖对免疫活性的影响［J］.中国食品学报，2010，10（5）：68-73.

［28］ 陈黎龙，游金明，黄建珍，等.γ-氨基丁酸对崇仁麻鸡生长性能和血液生理生化指标的影响［J］.动物营养学报，2010，22（2）：452-459.

［29］ 张利娟，王志祥.中草药制剂对蛋鸡肠道酶活和肠道微生物的影响［J］.东北农业大学学报，2010，41（6）：94-97.

［30］ Du X F，Jiang C Z，Wu C F，et al.Synergistic immunostimulatory effect of pidotimod and red ginseng acidic polysaccharide on humoral immunity of immunosuppressed mice［J］.An International Journal of Pharmaceutical Science，2008，63（12）：904-908.

［31］ 吴长德，吕戴春，方永辉.复方女贞子-黄芪制剂对雏鸡的免疫增强作用［J］.黑龙江畜牧兽医，2003（1）：30-31.

［32］ Artymiuk P J，Blake C C F，Grace D E P，et al.Crystallographic studies of the dynamic properties of lysozyme［J］.Nature，1979，280：563-568.

［33］ Kotwal G J，Isaacs S N，Mc Kenzie R，et al.Inhibition of the complement cascade by the major secretory protein of vaccinia virus［J］.Science，1990，250（4982）：827-830.

［34］ Jung A，Sippel A E，Grez M，et al.Exons encode functional and structural units of chicken lysozyme［J］.PNAS，1980，77：5 759-5 763.

［35］ 李 慧，唐江飞，孙 涛，等.γ-氨基丁酸对夏季高温期蛋鸡产蛋性能、蛋品质的影响及其机理研究［J］.动物营养学报，2010，22（6）：1 745-1 751.

［36］ 许丹妮，李 健，马玉芳，等.金线莲多糖对免疫抑制小鼠脾淋巴细胞增殖及免疫器官的影响［J］.中兽医医药杂志，2011，30（3）：15-17.

［37］ Marsh.Neuroendocrine-immune interraction［J］.Poultry Science，1994，73（7）：1 049-1 061.