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ZNF580在1-磷酸鞘氨醇诱导内皮细胞迁移和增殖中的作用*

2012-08-02韦淑萍孙慧燕张文成

中国病理生理杂志 2012年12期
关键词:锌指培养液内皮细胞

韦淑萍, 孙慧燕, 刘 未, 张文成△

(武警后勤学院 1人体解剖学教研室,2生理学与病理生理学教研室,天津 300162)

ZNF580是一个cDNA全长为1726 bp的新基因(GenBank注册号:AF184939),编码172个氨基酸组成的蛋白质,其C端94~172位氨基酸序列中含有3个串联重复的C2H2型锌指蛋白结构域[1]。本组前期研究证实ZNF580在人多种组织中均有表达且融合有绿色荧光蛋白的ZNF580主要聚集于HEK293 和 MGC803 细胞的细胞核中[2-3]。C2H2型锌指蛋白是人体最重要的一类调控蛋白,锌指转录因子不仅与基因表达、细胞分化、配子形成、胚胎发育等生命现象密切相关,而且它的分子结构变异与多种疾病及肿瘤相关[4]。GEO数据库显示:锌指蛋白ZNF580在损伤的动脉组织及慢性肝炎、缺氧等疾病中表达均上调,提示ZNF580可能参与血管发生的转录调节过程。

血管发生是新生血管的形成方式,在肿瘤生长、组织修复、免疫反应、风湿性关节炎、缺血性疾病、糖尿病性视网膜病等病理情况下起到重要作用[5],而内皮细胞的趋化、增殖、迁移、黏附和分化是生成新生血管的关键。多种细胞因子通过复杂的信号途径调控内皮细胞的增殖和迁移,从而诱导血管的发生。血管内皮细胞不仅是覆盖血管腔内表面的第一道屏障,而且是研究血管发生的良好模型。

1-磷酸鞘氨醇(sphingosine 1-phosphate,S1P)是溶血磷脂家族的重要成员,越来越多的证据证实S1P参与了内皮细胞迁移、分化、增殖、管道分化等血管发生的诸多过程[6-7]。S1P诱导的血管发生是通过与其特异性G蛋白耦联受体结合而发挥生物学效应。S1P作用于不同的受体,进一步通过 Gi、Gq、G12/13和 Rho 等途径来激活效应系统[8-9],包括腺苷酸环化酶(adenylate cyclase,AC)、磷脂酶C(phospholipase C,PLC)、磷脂酶 D(phospholipase D,PLD)、细胞外信号调节酶(extracellular signal-regulated kinase,ERKs)、c-Jun N 端激酶、p38丝裂原激活的蛋白激酶(p38 mitogen-actived protein kinase,p38 MAPK)和非受体酪氨酸激酶,将信息传递到细胞核,以调节靶基因的开关或表达水平,进而发挥多种生物学效应。

然而,包含在S1P信号通路的核转录因子尚未报道,而且,ZNF580的转录调节作用还尚未被证实。基于以上两点原因,本实验意在研究新锌指蛋白ZNF580在S1P诱导的内皮细胞增殖和迁移中的作用。

材料和方法

1 材料

1.1 细胞株 人脐静脉内皮细胞株EA.hy926、真核表达载体pEGFP-ZNF580和pEGFP-C1均为本室常规保存。

1.2 试剂 牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)购自 TBD;高糖 DMEM细胞培养液、MTT和DMSO购自Sigma;脂质体LipofectamineTM2000转染试剂与Trizol购自Invitrogen;RT-PCR试剂盒购自TaKaRa;PVDF膜购自Millipore;ZNF580多克隆抗体购自北京AVIVA生物工程有限公司;其它生化试剂均为进口分装或国产分析纯;各引物序列均由北京赛百盛公司合成,见表1。

表1 引物序列Table1.Sequences of the primers

2 方法

2.1 细胞培养 人脐静脉内皮细胞株EA.hy926细胞用含10%BSA的高糖DMEM细胞培养液培养,37℃、5%CO2孵箱培养,3 d换液1次。取对数生长期细胞提取总RNA和蛋白。

2.2 细胞转染 取对数生长期EA.hy926细胞,将其悬浮于不含抗生素的DMEM培养基中,浓度约为5×109cells/L,接种到6孔板中2 mL/well,生长至90%~95%融合时分为 3组:正常组、pEGFPZNF580转染组和pEGFP-C1空载体对照组。每组设6个平行孔。按LipofectamineTM2000产品说明书的操作方法进行转染。于37℃、5%CO2条件下继续培养细胞48 h,收获细胞提取RNA和蛋白。

2.3 RNA干扰 上海吉玛公司化学合成3对RNA干扰序列(序列1~3)、1对阴性对照序列 (NC)和1对阳性对照序列(PC),分别为:序列1上游引物5'-CUUCCAAAGGGAGGAGCAUTT -3',下游引物 5'-AUGCUCCUCCCUUUGGAAGTT-3';序列2上游引物5'-CUUUCUAGCUGUGUGAUGUTT -3',下游引物5'-ACAUCACACAGCUAGAAAGTT-3';序列3上游引物5'-GCACGUGCGCCUCCACUAATT-3',下游引物5'-UUAGUGGAGGCGCACGUGCTG-3';NC上游引物5'-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3',下游引物 5'- ACGUGACACGUUCGGAGAATT -3';PC上游引物5'-GUAUGACAACAGCCUCAAGTT-3',下游引物 5'-CUUGAGGCUGUUGCAUACTT -3'。筛选出最佳干扰序列用于后续实验。

2.4 RT-PCR 按Trizol试剂盒说明书提取各组细胞总RNA,紫外分光光度计检测RNA纯度并定量(A260/A280值介于 1.80 ~2.00 之间)。用 1 μg 总RNA进行cDNA的合成,半定量RT-PCR检测目的基因转录表达水平。PCR产物在1.5%琼脂糖凝胶中电泳并分析各目的基因与β-actin基因条带吸光度值。

2.5 Western blotting 收集对数生长期细胞提取总蛋白,采用BCA蛋白定量试剂盒进行蛋白定量。取各组样品与5×SDS凝胶加样缓冲液混合,煮沸变性5 min备用。取60 μg蛋白样品行聚丙烯酰胺凝胶电泳(12%分离胶,5%积层胶,稳压160 V)。湿转法转膜至PVDF膜上,5%脱脂牛奶封闭后将膜置于装有Ⅰ抗的杂交袋中,室温孵育1~2 h后,4℃过夜。然后将膜置于装有Ⅱ抗稀释液的杂交袋中,室温下孵育1~2 h后,采用HRP-DAB显色,将胶片进行扫描,凝胶图像处理系统分析目标条带的分子量和净吸光度值。同样步骤加入内参β-actin抗体,检测样品中β-actin的蛋白表达作为内参照。

2.6 Transwell细胞迁移实验 37℃孵箱孵育预先加入matrigel基质胶的Transwell小室(聚碳酸酯膜孔径8 μm)中过夜。无血清DMEM培养液饥饿细胞,次日消化并计数。向铺胶的Transwell小室上室中加入200 μL/well密度为1×109cells/L的细胞,下室加入500 μL含10%FBS的DMEM培养基。37℃、5%CO2培养细胞48 h,用棉签擦掉上室残余基质胶和未穿过的细胞,下室固定染色,光镜下观察结果,计数细胞。每组设3个平行孔。

2.7 MTT比色法 0.25%胰酶消化对数生长期细胞成单细胞悬液,将浓度为1×107cells/L的细胞接种于96孔培养板中200 μL/well,每组细胞设6个平行孔。无血清细胞培养液同步化细胞。37℃、5%CO2,含10%BSA的DMEM培养液继续培养细胞48 h。每孔加入5 g/L MTT液20 μL,继续培养4 h,弃培养液,加入150 μL DMSO,酶标仪测定各孔490 nm处的吸光度(A)值。细胞增殖率(%)=实验组平均A值/对照组平均A值×100%。

3 统计学处理

用SPSS 16.0统计软件进行分析。数据用均数±标准差()表示,组间比较采用单因素方差分析(ANOVA),组间两两比较采用最小显著性差异法(LSD法)。实验重复3次。以P<0.05为差异有统计学意义。

结 果

1 S1P增强EA.hy926内皮细胞ZNF580的表达

利用 S1P1、S1P2、S1P3、S1P4 和 S1P5 各受体的上、下游引物,以提取EA.hy926内皮细胞的总RNA作模板,经RT-PCR扩增cDNA的特异性片段,1.5%琼脂糖凝胶电泳检测EA.hy926细胞S1P受体的表达情况。结果显示,EA.hy926内皮细胞表达S1P1、S1P3和S1P5受体,其cDNA的特异性扩增产物分别为352 bp、701 bp和236 bp,因此可作为研究S1P对EA.hy926细胞作用的良好模型,见图1。

Figure1.S1P receptor expression profile in EA.hy926 cells.M:DL2000 marker;β-actin:547 bp;S1P1:352 bp;S1P3:701 bp;S1P5:236 bp.图1 EA.hy926细胞表达S1P受体情况

1.1 剂量效应 EA.hy926内皮细胞用不同浓度的S1P(0 μmol/L、0.1 μmol/L、0.5 μmol/L、1 μmol/L、5 μmol/L、10 μmol/L)刺激 4 h 后收集细胞(于加S1P前用无血清的DMEM培养液饥饿细胞12~16 h),提取细胞总RNA和蛋白。结果显示,S1P处理的EA.hy926细胞 ZNF580 mRNA(图2A)和蛋白(图2B)表达水平呈浓度依赖性增高。S1P浓度为0.5 μmol/L时,ZNF580的表达达到峰值。

1.2 时间效应 EA.hy926内皮细胞用最适浓度S1P(0.5 μmol/L)孵育不同时间(0 h、1 h、2 h、4 h、8 h、12 h)后收集细胞(于加S1P前用无血清的HDMEM培养液饥饿细胞12~16 h),提取细胞总RNA和蛋白。结果显示,S1P处理的 EA.hy926细胞ZNF580 mRNA(图3A)和蛋白(图3B)表达水平呈时间依赖性增高。S1P处理4 h,ZNF580的表达达到峰值。

Figure2.S1P upregulated both ZNF580 mRNA(A)and protein(B)levels in a concentration-dependent manner..n=6.*P<0.05 vs control group.图2 S1P上调ZNF580 mRNA和蛋白的表达具有浓度依赖性

Figure3.S1P up-regulated both ZNF580 mRNA(A)and protein(B)levels in a time-dependent manner..n=6.*P<0.05 vs control group.图3 S1P上调ZNF580 mRNA和蛋白的表达具有时间依赖性

2 S1P通过p38 MAPK信号通路影响ZNF580的表达

实验分为正常对照组、S1P处理组、SB203580+S1P处理组和DMSO+S1P阴性对照组。当细胞融合度为70%~80%时,在各组内分别加10 μmol/L培养基、10 μmol/L 培养基、10 μmol/L SB203580 和 10 μmol/L DMSO;1 h 后,对应组内分别加 0.5 μmol/L培养基、0.5 μmol/L S1P(最适浓度)、0.5 μmol/L S1P 和0.5 μmol/L S1P;4 h(最适时间)后收集细胞(处理前用无血清的DMEM培养液饥饿细胞12~16 h)。收集的细胞提取细胞总RNA和蛋白进行检测。结果显示,SB203580显著抑制了S1P对ZNF580表达的上调作用,见图4。

3 ZNF580促进内皮细胞迁移和增殖

利用脂质体转染法获得瞬时高表达和瞬时低表达ZNF580的内皮细胞,实验分为3组:EA.hy926正常组、pEGFP-ZNF580组和 ZNF580-siRNA组。Transwell迁移实验结果(图 5A)显示:pEGFPZNF580组迁移活性约为正常组的2.5倍,ZNF580-siRNA组迁移活性约为正常组的1/2(P<0.01)。MTT增殖实验结果显示(图5B):pEGFP-ZNF580组增殖活性约为正常组的3倍,ZNF580-siRNA组增殖活性约为正常组的1/3(P<0.01)。

Figure4.SB203580 partly inhibited S1P-induced up-regulation of ZNF580 mRNA(A)and protein(B)..n=6.*P<0.05 vs control group;#P <0.05 vs S1P group.图4 SB203580抑制了S1P诱导的ZNF580表达的上调作用

Figure5.The effects of ZNF580 on endothelial cell migration(A,n=3)and proliferation(B,n=6)..**P<0.01 vs control group.图5 ZNF580对内皮细胞迁移和增殖的影响

讨 论

ZNF580是由本课题组克隆得到的一种新的锌指蛋白基因。氨基酸序列分析显示:ZNF580 N端5~88位氨基酸序列为脯氨酸富含域,C端94~172位氨基酸序列中含有3个串联重复的C2H2型锌指蛋白结构域。多数C2H2型锌指蛋白具有核定位信号(nuclear localization signal,NLS),在真核细胞内可穿过核孔进入细胞核内,作为核转录因子调控其它基因的表达。本组前期研究工作:将ZNF580编码区克隆到真核表达载体pEGFP-C1上,转染人胚肾上皮细胞系HEK293和胃癌细胞系MGC803进行瞬时表达,融合有绿色荧光蛋白的ZNF580蛋白主要聚集于上述细胞的细胞核中。ZNF580蛋白的核定位信号位于C端C2H2型锌指主构域94~172位氨基酸区间。然而,ZNF580在内皮细胞中迁移和增殖过程中的核转录作用至今尚不清楚。

S1P是溶血磷脂家族的一个重要成员,在细胞增殖、迁移、分化与凋亡及肿瘤形成等过程中发挥着非常重要的作用。S1P可与其特异性受体结合,通过多种信号通路(腺苷酸环化酶、磷脂酶C、c-Jun、p38 MAPK等)将信息传递到细胞核,激活核转录因子,从而发挥作用。我们的实验欲在S1P这个平台上研究人C2H2型锌指蛋白ZNF580这个核转录因子在内皮细胞增殖和迁移中的作用。

本实验首先检测了EA.hy926内皮细胞S1P受体表达情况。结果显示,EA.hy926细胞表达S1P1、S1P3和 S1P5三种S1P受体。故EA.hy926可作为研究ZNF580在S1P诱导内皮细胞迁移和增殖作用的良好模型。

接下来检测了 S1P刺激 EA.hy926细胞后ZNF580的表达情况。结果显示,S1P刺激EA.hy926细胞后,ZNF580 mRNA和蛋白的表达均增加,且有剂量(0~10 μmol/L)和时间(0~12 h)效应。故推测ZNF580可能参与了S1P诱导EA.hy926细胞后的生物学过程。有研究证实,S1P与其受体结合,通过激活重要的激酶,如p38 MAPK等信号通路影响内皮细胞的迁移和增殖。我们检测了p38 MAPK特异性信号通路抑制剂SB203580对ZNF580表达的影响,发现 p38 MAPK特异性信号通路抑制剂SB203580能够抑制S1P诱导的ZNF580的上调作用,说明S1P诱导的ZNF580表达通过p38 MAPK信号通路。MAPKs在细胞核发挥作用,其作用底物为核转录因子。而且,经分子生物学网站分析:ZNF580蛋白14~17位 SSPE、93~96位SCPE和113~116位SHSD氨基酸为酪蛋白激酶II磷酸化作用位点(casein kinase II phosphorylation site);60~65位GVPYTY氨基酸为N-豆蔻酸化位点(N-myristoylation site);109~111位SHR和141~143位THR氨基酸为蛋白激酶C磷酸化作用位点(protein kinase C phosphorylation site);130~133位 KRSS氨基酸为cAMP及cGMP-依赖型蛋白激酶磷酸化作用位点(cAMP-and cGMP-dependent protein kinase phosphorylation site)。因此可以推测,核转录因子ZNF580可能为p38 MAPK的下游靶点。

转录因子与特异DNA序列结合,通过激活或抑制下游靶基因的表达从而产生广泛的分子效应。为了研究ZNF580在S1P诱导的内皮细胞迁移和增殖中的作用,我们利用pEGFP-ZNF580和ZNF580-siRNA分别转染EA.hy926细胞,获得瞬时过表达和瞬时低表达 ZNF580的 EA.hy926内皮细胞。ZNF580过(低)表达的内皮细胞迁移和增殖活性明显增强(减弱),提示ZNF580在S1P诱导的内皮细胞迁移和增殖中发挥重要的调控作用。

综上所述,S1P通过 p38 MAPK信号通路增强ZNF580的表达,ZNF580在S1P诱导的内皮细胞迁移和增殖的过程中起着非常重要的调控作用。该研究阐明了一条与血管发生相关的信号转导途径,为探讨ZNF580的功能及其与血管发生之间的关系提供科学依据。

[1]张文成,陈保生,曾武威,等.低密度脂蛋白诱导下调的新基因cDNA的克隆及组织表达[J].基础医学与临床,2003,23(3):279 -282.

[2]张文成,孙慧燕,罗玉玉,等.ZNF580与EGFP融合蛋白表达载体的构建及其在HEK293细胞的表达和定位[J].武警医学院学报,2008,17(3):161 -165.

[3]张文成,孙慧燕,孟祥艳,等.ZNF580-EGFP融合蛋白的亚细胞定位研究[J].中国病理生理杂志,2008,24(8):1590-1594.

[4]Mingot JM,Vega S,Maestro B,et al.Characterization of Snail nuclear import pathways as representatives of C2H2zinc finger transcription factors[J].J Cell Sci,2009,122(Pt 9):1452-1460.

[5]Lopez ES,Rizzo MM,Croxtto JO,et al.Suramab,a novel antiangiogenic agent,reduces tumor growth and corneal neovascularization[J]. Cancer Chemother Pharmacol,2011,67(3):723-728.

[6]Olivera A,Kohama T,Edsall L,et al.Sphingosine kinase expression increases intracellular sphingosine-1-phosphate and promotes cell growth and survival[J].J Cell Biol,1999,147(3):545 -558.

[7]Means CK,Brown JH.Sphingosine-1-phosphate receptor signalling in the heart[J].Cardiovasc Res,2009,82(2):193-200.

[8]Mastrandrea LD,Sessanna SM,Del Toro A,et al.ATP-independent glucose stimulation of sphingosine kinase in rat pancreatic islets[J].J Lipid Res,2010,51(8):2171 -2180.

[9]Beljanski V,Knaak C,Smith CD,et al.A novel sphingosine kinase inhibitor induces autophagy in tumor cells[J].J Pharmacol Exp Ther,2010,333(2):454 -464.

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