紫甘薯色素的提取及纯化研究
2011-05-30程林润郭入安俞金龙钱秋平
程林润,郭入安,朱 璞,俞金龙,钱秋平
(1.浙江省金华市农业科学研究院,浙江 金华 321000;2.永康市阳光天然色素厂,浙江 永康 321300)
1856年英国人发明第1种合成色素苯紫胺,由于其色泽鲜艳,着色力强、稳定性高,合成色素被大量应用于食品中,但随着人们对合成色素的安全性的深入研究,发现很多合成色素对人体有害,其安全性受到质疑,并确认部分合成色素具有潜在的致畸致癌及其他毒副作用[1-4]。美国1976年禁止使用合成色素苋菜红之后,就已逐步重视对天然色素的开发和应用。
食用天然着色剂 (天然色素)是由天然资源获得的食品用色素。主要从动物和植物组织及微生物 (培养)中提取的色素,其中植物性着色剂占多数。天然色素不仅具有给食品着色的作用,而且,相当部分天然色素具有生理活性。截至2008年5月,我国经国家主管部门批准使用的天然食用色素,已有43种,是目前世界上允许使用天然色素最多的国家之一。
目前市售的天然色素价格昂贵,因此,寻找一种优质高产、价廉的天然色素资源是生产的迫切需要。紫甘薯不仅富含天然红色素,价格低廉,而且有抗病、抗旱等优点,是一种很好的安全性高的水溶性天然色素原料。最重要是紫甘薯色素不像萝卜红、紫甘蓝色素那样有难以除掉的异味,可以用在很多种食品上的着色。紫甘薯色素是从紫甘薯中提取出来的,其主要成分为花色苷类化合物,是天然水溶性食用色素。我们就紫甘薯色素的提取与精制作了初步研究,现将有关结果报道如下。
1 材料与方法
1.1 材料
紫甘薯品种为绫紫,种植于金华市农科院科研基地。大孔吸附树脂购自沧州宝恩化工有限公司。
仪器有UV-2501紫外可见分光光度计 (日本岛津),HH-4电子恒温水浴锅 (金坛市江南仪器厂),PHS-3C酸度计 (上海精密科学仪器厂),AL-104电子天平 (梅特勒.托利多仪器 (上海)有限公司),R-201旋转薄膜蒸发器 (上海申胜生物技术有限公司)。试剂有95% 乙醇,HCl,柠檬酸,NaOH,均为分析纯。
1.2 方法
洗净紫甘薯用刀切成0.3mm左右粗细丝,备用。
提取溶液的确定。根据紫甘薯所含的花青素色素为类黄酮系化合物,具有类黄酮的典型结构,即2-苯基苯并吡喃阳离子,采用极性的酸化水酸性乙醇或乙醇来提取。根据所用溶剂提取物质时选用溶剂的相似相溶原理,在提取达到动态平衡后,极性合适的溶剂对所提取物质的溶解度大的方法来选择提取溶剂。分别精确称取紫甘薯丝4份,每份2 g(精确至0.0002 g),至4个100mL容量瓶中,分别用0.2% HCl水溶液,0.2%柠檬酸水溶液,0.2%HCl和95%乙醇液,95%乙醇溶液定溶至100mL。于50℃水浴中提取,提取时间2 h。提取时间完成后,冷却定容,过滤后测定。
HCl浓度 (pH值)的确定。分别精确称取紫甘薯丝4份,每份10 g(精确至0.0002 g)分别至4个250mL三角瓶中,分别添加0.1%HCl水溶液(pH值3.5)100mL,0.2%HCl水溶液 (pH值3.0)100mL,0.3%HCl水溶液 (pH值2.5)100mL,0.4%HCl水溶液 (pH值2.0)100mL。于50℃水浴中提取,提取时间2 h。提取时间完成后,冷却过滤稀释测定。
提取温度与时间的确定。分别精确称取紫甘薯丝3份,每份10 g(精确至0.1 g)分别至3个250mL三角瓶中,用0.3%HCl水溶液定溶至100mL。分别于常温,50℃,80℃下,每30min测定1次水浴中的提取物,提取时间4 h结束。
色素的精制。紫甘薯的色素粗提取液,内含有淀粉、果胶、糖类等杂质,必须进行精制。对于淀粉、果胶类杂质可采用沉降的方法去除,而糖类杂质须经过大孔吸附树脂进行纯化。取经预处理的HPD-100、HPD-722、HZ-816、HZ-820的大孔吸附树脂各1 g于250mL三角杯中,加入100mL紫甘薯提取液,摇动吸附24 h,根据吸附前后提取液吸光值的变化计算出树脂的吸附色素量,然后用70%的乙醇解析后,分别测其吸光度值。根据吸附容量和解吸液的吸光度值,选择大孔吸附树脂。
2 结果与分析
2.1 提取溶剂
用0.2%HCl水溶液,0.2%柠檬酸水溶液,0.2%HCl和95%乙醇溶液,95%乙醇溶液提取紫甘薯,结果 (表1)紫甘薯用0.2%HCL和95%乙醇液提取效果最好,0.2%HCL水溶液提取效果次之,两者差别不是很大,但是用0.2%HCl水溶液提取,因其价格低廉,更适合于大规模生产,所以选用HCl的水溶液作为提取溶剂。
2.2 HCl浓度
从表2可以看出,紫甘薯用0.4%HCl水溶液提取效果最好,但是其加入的酸量较多,pH值很低,对设备有一定的腐蚀性,所以对设备的要求高,另外其在600 nm处的吸光值偏高,说明其对紫甘薯中的杂质溶解较多。综合考虑,选用0.2%的HCl水溶液为提取溶剂。
表1 不同溶剂提取紫甘薯色素的效果
表2 不同浓度HCl水溶液提取紫甘薯色素的效果
2.3 提取温度与时间
从表3可以看出,常温下提取溶液的吸光度值上升变化比较缓慢,达到最大值时所需时间比较长,而在以50℃温度条件下提取的较为合适,达到最大值时所需时间比较理想,在80℃时,提取色素达到最大值所用时间短,但同时由于色素受高温的影响,随着提取时间的延长,色价降低。所以提取时温度过高过低都不理想。综合考虑以提取温度50℃,提取时间2 h为宜。
表3 不同提取温度和时间提取紫甘薯色素的效果
2.4 精制
从表4可以看出,HPD-100大孔吸附树脂有着优良的吸附与解析性能,无论是吸附量还是解析量,均比较理想,这种树脂可以用在紫甘薯色素的纯化工艺中。
表4 不同吸附树脂的吸附与解析效果
3 小结与讨论
试验结果表明,以0.2%的盐酸水溶液为提取溶剂,在料液比1∶5,提取温度50℃,提取时间2 h的条件下可获得最大的提取收率,粗提物经过滤后上PDA-100大孔吸附树脂吸附,然后用70%的乙醇解析,解析液浓缩干燥后可得到色价E1%1cm530 nm=100的高色价紫甘薯色素的粉状产品。
紫甘薯色素生产工艺简单可行,且其原料来源广泛,价格低廉,值得大力推广,因此其有很好的开发前景。
[1]Goda Y,Shimizut,Kato Y.Two acylaled anthocyanins of purple sweetpotato [J].Phytochemistry,1997,44(1):183-186.
[2]尹晴红,刘邮洲,谢一芝,等.紫甘薯花色苷的提取条件[J].江苏农业学报,2002,18(4):236-240.
[3]凌关廷.天然食品添加手册 [M].北京:化学工业出版社,2009.
[4]刘雅春.食品添加剂品种优化选择与性能分析检测标准及应用工艺实用手册 [M].长春:吉林出版发行集团,2004.