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猪繁殖与呼吸综合征研究进展

2011-02-12杜红红

中国畜牧兽医文摘 2011年5期
关键词:耳病编码仔猪

张 波 杜红红

(山东省高密市姜庄镇仁和兽医站,高密 261507)

1 前言

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)又称“猪蓝耳病”,以引起猪呼吸道感染、仔猪死亡、母猪繁殖障碍等临床症状为特征。该病是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的一种传染病,PRRSV为一种有囊膜的单股正链RNA病毒,具有高度的变异性,来源于不同地区PRRSV毒株之间的核苷酸序列存在显著差异,根据这些差异可将PRRSV分为两种基因型即美洲型和欧洲型,这2种基因型间的核苷酸序列同源性仅为55%~80%。本文就PRRS病原学、诊断和控制技术进行阐述。

2 病原学

2.1 一般特性

PRRSV属于尼多病毒目、动脉炎病毒科、动脉炎病毒属,为一种有囊膜的单股正链RNA病毒,PRRSV与乳酸脱氢酶增高症病毒(LDV)、马动脉炎病毒(EAV)与猴出血热病毒(SHFV)在形态学、细胞嗜性、复制体系及蛋白结构上具有一定的类似性。病毒特征为感染细胞初期折光性增强,出现圆缩、集聚,随时间延长细胞固缩,最后溶解脱落。

2.2 分子生物学特征

PRRSV基因组全长约15 kb,不分节,含8个开放性阅读框(ORFs),即ORF la、ORF lb、ORF2、ORF3、ORF4、ORF5、ORF6和ORF7,每个ORF(从ORF1~ORF7)和相邻的ORF部分重叠,在其5′、3′分别有一非编码区。在5′非编码区前有一个“帽子”结构,3′非编码区后有多聚腺苷酸(PolyA)尾巴。ORF1a和ORF1b组成占病毒基因组的80%,编码病毒的复制酶RNA聚合酶。ORF2~ORF7编码病毒结构蛋白。其中,ORF2~ORF5编码病毒的糖基化蛋白,ORF6编码膜基质蛋白(M蛋白),ORF7编码核衣壳蛋白(N蛋白)。

2.3 遗传变异与抗原多样性

PRRSV毒株存在着很强的变异性,不同株的抗原性及其毒力都有差别,美洲型与欧洲型分离株虽然存在着血清学交叉,但大部分存在着很大的抗原差异[5]。

2.4 发病机制

PRRSV侵染细胞的方式是首先和猪肺泡巨噬细胞上的受体结合,然后经胞吞作用进入细胞,随着细胞的崩溃,进入血液循环和淋巴循环,结果可导致病毒血症的形成及全身淋巴结的感染[4]。

3 PRRS诊断

3.1 临床症状与病理变化

母猪反复出现体温升高,食欲不振,嗜睡,呼吸困难,后期流产、早产、产死胎、胎儿木乃伊化,个别猪的双耳、腹侧及外阴皮肤呈现青紫色或紫斑块。还出现泌乳困难,分娩困难,继发性膀胱炎,重复发情,久配不孕等症状。公猪除可出现发热、厌食和咳嗽等症状外,还有暂时性精液质量下降、精子运动力下降、畸形精子增多,在出现症状13周后恢复正常。生长肥育猪发病后呼吸困难,咳嗽,耳部、腹部和阴部皮肤发粗,故又称为“蓝耳病”。刚断奶仔猪常由于继发一些病毒性或细菌性疾病而使病死率增高,主要病变常见肺有弥漫性间质性肺炎。仔猪生长发育不良,常在初生1周内死亡,呼吸困难,有时可见结膜炎和眼周水肿。哺乳仔猪体温升高,腹泻,眼睑红肿,结膜炎,四肢外展呈八字形,机体脱水,体质虚弱,呼吸困难,有出血症状,皮肤上有很多斑块,有的出现关节病、败血症等。

3.2 病毒分离与RT-PCR检测

病毒分离(Virus isolation,VI)是诊断该病最可靠的一种方法。病毒分离时最好采用死胎或活仔猪的肺、心、脑、肾、肝和脾等组织器官,怀孕后期流产胎儿的血清也是常用于分离PRRSV的样品,从木乃伊胎儿则难以分离到病毒,公猪的精液不能用于PRRSV的分离,因为精液对细胞有较大的毒性[7]。研究发现,不同的病毒株适合在不同的细胞上增殖,大多数PRRSV毒株均适应在PAM中增殖.

3.3 血清学诊断

血清学诊断方法是应用最广泛的诊断方法。对于PRRSV的血清学诊断,国内外己建立了4种PRRSV抗体检测方法,即免疫过氧化物酶单层试验(IPMA)、间接荧光抗体试验(IFA)、血清中和试验(SN)和酶联免疫吸附试验(ELISA)。IPMA是欧洲国家广泛用于该病诊断的一种方法,敏感性和特异性都比较好,可用于PRRSV的病毒鉴定及血清抗体检测,该方法在欧美等国已广泛用于PRRSV感染的研究[1].

4 防控措施

4.1 预防接种

灭活疫苗PRRSV灭活疫苗具有安全,不存在散布病毒和造成PRRS新疫源的危险,便于贮存和运输,对母源抗体的干扰作用不敏感等优点,故成为人们首选用来预防和控制PRRS的疫苗。

4.2 综合防控措施

目前对此病尚无特别有效的控制方法,原因可能有多方面:①PRRSV很容易发生变异,从而逃避免疫反应;PRRSV的免疫反应复杂而特异,有时病毒血症与循环抗体同时存在,而且PRRSV本身破坏免疫细胞,因而很容易在猪体形成持续性感染;②猪群感染PRRSV后,极容易继发其他低毒力病原的混合感染。

预防PRRS发生可采取以下几方面综合性防制措施:①种猪场或规模养猪场应严格执行消毒制度,限制访客入场,必要入场人员应更衣换鞋,车辆、用具均应消毒,一般对猪瘟病毒有效的消毒药均可用于本病的消毒,如过氧乙酸、各种有机酸和表面活性剂等;②育成猪实行“全进全出”制,每批进出前后,猪舍都要严格清洁消毒。哺乳猪提早断奶,母仔隔离饲养,不同年龄猪群相互隔离,分别饲养在不同场区,可减少病毒从老龄猪传至仔猪的机会,有助于消除猪群的持续感染;③PRRSV清除方案,通过ELISA方法和RT-PCR方法同时监测血清中PRRSV抗体和抗原,建立整个繁殖群的监测系统,将带毒种猪清除,从而达到阻止PRRSV垂直传播的目的。

[1] Hall W V. Porcine reproductive and respiratory syndrome(PRRS)virus a significant disease of pigs [J] . Aust Vet J,2005,83(5):260-261

[2] Wensvoort G,Terpst ra C,Pol J M A,et al . Mystery swine dis2ease in t he Nether lands:isolation of Lelystad virus[J ] . Vet Q,1991,(13):121~130

[3] 蔡宝祥,等.家畜传染病(第四版)[M].北京:中国农业出版社,2001

[4] 郭宝清,陈章水,刘文兴,等.从疑似PRRS 流产胎儿分离猪生殖与呼吸障碍综合征病毒(PRRSV)的研究[J] .中国畜禽传染病,1996,(2):125

[5] 许豆艳,等.高致病性猪蓝耳病的流行特点、诊断与综合防制[J].畜禽业.2008,(1):30~31

[6] 林荣连,浅谈高致病性猪蓝耳病的预防措施[J].广西农学报.2008,4(23):61~62

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